Geneticamente encodable bioluminescente sistema de fungos

Significância

apresentamos a identificação da luciferase e enzimas da biossíntese de um eucarióticas luciferina de fungos. Os fungos possuem um sistema bioluminescente simples, sendo a luciferina apenas dois passos enzimáticos de vias metabólicas conhecidas. A expressão de genes da via bioluminescente fúngica não é tóxica para as células eucarióticas, e a luciferase pode ser facilmente cooptada para aplicações de bioimaging., Com o sistema fúngico sendo um sistema bioluminescente geneticamente codificável a partir de eucariontes, é agora possível criar artificialmente eucariontes bioluminescentes pela expressão de três genes. O sistema bioluminescente fúngico representa um exemplo de Evolução molecular de uma característica ecológica complexa e com detalhes moleculares relatados no artigo, permitirá pesquisas adicionais sobre a significância ecológica da bioluminescência fúngica.,

Abstract

bioluminescência é encontrada em toda a árvore da vida, conferindo um conjunto espectacular de funções visualmente orientadas de atrair companheiros para afugentar predadores. Meia dúzia de luciferinas diferentes, moléculas que emitem luz quando oxidadas enzimaticamente, são conhecidas. No entanto, apenas uma via bioquímica para a biossíntese da luciferina foi descrita na íntegra, que é encontrada apenas em bactérias., Aqui, relatamos a identificação da luciferase fúngica e três outras enzimas chave que juntos formam o ciclo biossintético da luciferina fúngica a partir do ácido cafeico, um metabolito simples e generalizado. A introdução dos genes identificados no genoma da levedura Pichia pastoris, juntamente com os genes de biossíntese do ácido caffeico, resultou numa estirpe autoluminescente nos meios normais. Analisamos a evolução das enzimas do ciclo de biossíntese da luciferina e descobrimos que a bioluminescência fúngica surgiu através de uma série de eventos que incluíram duas duplicações genéticas independentes., A retenção do duplicado enzimas da luciferina caminho em nonluminescent fungos mostra que a duplicação de genes foi seguido funcional sequência de divergência de enzimas de pelo menos um gene no caminho biossintético e sugere que a evolução de fungos bioluminescência, procedeu-se através de várias intimamente relacionados trampolim nonluminescent reações bioquímicas com o adaptive funções. A disponibilidade de uma via de biossíntese eucariótica completa da luciferina fornece várias aplicações na biomedicina e bioengenharia.,a bioluminescência é um fenómeno natural de emissão de luz resultante da oxidação de um substrato, a luciferina, catalisada por uma enzima, a luciferase. Uma variedade de espécies bioluminescentes na natureza (1); para muitos deles, a capacidade de emitir luz é uma característica definidora de sua biologia (2⇓-4). A integração Artificial de reações bioluminescentes naturais em sistemas vivos também se tornou uma ferramenta de comunicação amplamente utilizada na biologia molecular e celular (5, 6)., No entanto, os sistemas bioluminescentes naturais permanecem mal caracterizados em um nível bioquímico, limitando a aplicação mais generalizada. Apenas 9 luciferinas e 7 famílias de genes de luciferase foram descritas (7, 8) de pelo menos 40 sistemas bioluminescentes que se pensa existirem na natureza (9). Lamentavelmente, apenas uma única cascata bioquímica, partindo de um metabolito generalizado para uma luciferina, foi descrita na sua totalidade (10). A via descrita é bacteriana e tem aplicação limitada em eukaryotes (11)., Nenhum dos sistemas bioluminescentes eucarióticos foi descrito com pormenor suficiente para ser expresso noutro organismo ou para criar organismos bioluminescentes artificiais autónomos. Aqui, descrevemos a função e a evolução dos genes-chave responsáveis pela bioluminescência do fungo Neonothopanus nambi e mostramos que a expressão dos genes fúngicos é suficiente para criar autonomamente eucariontes bioluminescentes.aproximadamente 100 espécies de fungos da ordem Agaricales emitem luz utilizando a mesma reacção bioquímica (12)., Embora o papel ecológico de sua bioluminescência não seja totalmente compreendido, há evidências de que pode ser usado por fungos para atrair insetos que distribuem esporos (13). A bioluminescência fúngica era conhecida por utilizar pelo menos quatro componentes: oxigênio molecular; a luciferina, que foi recentemente identificada como 3-hidroxispidina ; e duas enzimas chave previamente não descritas, uma hidroxilase dependente de NAD(P)e uma luciferase (15, 16).para identificar as enzimas da via bioluminescente fúngica, focámo-nos primeiramente no isolamento do gene da luciferase. Expressando o N., Nambi cDNA library in Pichia pastoris and spraying agar plates with synthetic 3-hydroxyhispidin, we identified and sequenced a luminescent levedure colony expressing the luciferase gene (SI Appendix, Figs. S1 e S13). A Nambi luciferase, nnLuz, é uma proteína 267-aa (Apêndice SI, Fig. S2) e não tem homólogos descritos ou similaridade de sequência pronunciada com domínios proteicos conservados, representando uma nova família proteica.os Genes que codificam enzimas que sintetizam metabolitos secundários são frequentemente agrupados em genomas fúngicos (17)., Hipotetizamos que este pode ser o caso das enzimas da cascata bioluminescente, porque acredita-se que a cascata é conservada entre os fungos bioluminescentes (12). Procurámos, assim, genes relacionados com a biossíntese da luciferina nas proximidades do gene da luciferase no genoma de N. nambi. Além N. nambi, nós também sequenciados os genomas e transcriptomes de fungos bioluminescentes Neonothopanus gardneri, Mycena citricolor, e Panellus stipticus e comparou-os com publicamente disponíveis sequências do genoma de bioluminescentes e nonbioluminescent fungos (18, 19)., Descobrimos que a luciferase é um membro de um conservada do gene cluster, que inclui pelo menos dois outros genes: h3h e hisps (Fig. 1 B E C e conjuntos de dados S1–S3).

iv xmlns:xhtml=”http://www.w3.org/1999/xhtml”> Fig. 1. via de biossíntese da luciferina na bioluminescência fúngica e cluster genético contendo enzimas chave no clado dos fungos bioluminescentes. A) via proposta de biossíntese e reciclagem da luciferina fúngica. O ácido cafeico é convertido em hispidina pela hispidin sintase (HispS) e hidroxilado por H3H, produzindo 3-hidroxispidina (luciferina fúngica)., A luciferase (Luz) adiciona oxigênio molecular, produzindo um endoperóxido como um intermediário de alta energia com decomposição que produz oxiluciferina (caffeilpiruvato) e emissão de luz. A oxiluciferina pode ser reciclada em ácido cafeico por hidrolase de caffeilpiruvato (CPH). B) descrição esquemática do aglomerado genómico de N. nambi contendo genes de luciferase, H3H, hispidin sintase e hidrolase de caffeilpiruvato (cph). C) aglomerado genético no clado dos fungos bioluminescentes. A árvore de espécies à esquerda é baseada na comparação de genes codificadores de proteínas compartilhadas pela maioria das espécies analisadas., As cruzes vermelhas marcam os ramos da árvore que eventualmente perderam a capacidade de brilhar. A direita mostra a estrutura do aglomerado de genes contendo luciferase se tal aglomerado foi encontrado no genoma relevante. Os genes que codificam para luciferase (luz), h3h, hispidin synthase (his), E hidrolase de caffeilpiruvato (cph) são coloridos. As cores mais azuis e vermelhas dos genes hisps e luz indicam que apenas um gene parcial ou truncado foi encontrado em Armillaria mellea e Guyanagaster necrorhiza, respectivamente. Outros genes que podem pertencer ao aglomerado são nomeados de O1 a O4 (coloridos em cinza)., Carraças verdes representam um gene semelhante ao citocromo P450 (diferentes tons de verde indicam diferentes grupos ortólogos), e carraças pretas indicam outros genes.

o gene h3h mostrou semelhança de sequência com 3-hidroxibenzoato 6-monooxigenases, enzimas que catalisam oxidação de 3-hidroxibenzoato usando NADH e oxigénio molecular. Esta reacção é idêntica à que converte a hispidina em luciferina(Fig. 1A); thus, we hypothesized that h3h gene codes for hispidin-3-hydroxylase( H3H), the enzyme corresponding to the predicted hydroxylase (15)., Clonámos o gene de N. nambi e descobrimos que as colónias de P. pastoris que expressam nnluz e nnh3h emitem luz quando pulverizadas com o precursor de luciferina hispidina, ao contrário das colónias de controlo que expressam apenas nnluz (Apêndice SI, figos. S14 e S17)—confirmando que nnh3h converte hispidin em luciferina.

o gene hips (Fig. 1C) codifica um membro da família da poliquetida sintase, enzimas que produzem metabolitos secundários em uma variedade de organismos através da árvore da vida (20)., Polyketide synthases normalmente, adicionar malonyl metades para o crescimento da cadeia de carbono; portanto, o α-pyrone natureza de hispidin sugeriu que sua biossíntese pode ser realizada por um polyketide sintase de ácido caféico por dois ciclos de adição de malonyl unidades, seguido por lactonization (Fig. 1A E SI Appendix, Fig. S3). Grandes poliquetainas modulares requerem modificações pós-transferacionais para sua atividade (21), tais como a transferência de um grupo fosfopanteteinil para um resíduo de serina conservado do domínio de proteína Carrier acil., Para testar se hisps gene pode produzir luciferina precursor em um heterologous sistema integrado hisps, nnluz, e nnh3h genes em conjunto com o Aspergillus nidulans 4′-phosphopantetheinyl transferase npgA no genoma de P. pastoris. Quando cultivadas num meio contendo ácido cafeico, leveduras que exprimem todos os quatro genes emitiram luz vista a olho nu (Fig. 3A), embora não tenha sido observada produção de luz significativa em estirpes sem genes npgA ou hips (Apêndice SI, figos. S15 e S17)., Portanto, hisps cataliza a síntese da hispidina do ácido cafeico, fechando a cadeia de reações (o” ciclo do ácido cafeico”) a partir de um metabolito celular comum com biossíntese conhecida para uma luciferina eucariótica.

em algumas espécies bioluminescentes de fungos,o aglomerado genómico acomoda um ou dois genes adicionais (Fig. 1C): um pertencente à família do citocromo P450 e o outro pertencente à família das hidrolases de fumarilacetoacetato., Este último (cph) provavelmente codifica uma hidrolase de caffeilpiruvato (Dataset S4) envolvida na reciclagem da oxiluciferina, consistente com o cafeilpiruvato, a oxiluciferina fúngica, sendo hidrolisada em cafeato e piruvato por uma hidrolase presente em extractos brutos fúngicos (22).

a Conservação do gene cluster sugere que, em contraste com outros grupos de organismos bioluminescentes (23), a bioluminescência evoluiu em fungos apenas uma vez, com luz, h3h, e hisps genes emergentes através de duplicações do gene. Reconstructed phylogenetic trees for luz, h3h, and hips genes (SI Appendix, Figs., S4-S6) e a árvore da ordem Agaricales (Fig. 2) reveal the evolution of the bioluminescence cascade in fungi. A principal enzima luz da cascata de bioluminescência fúngica emergiu através de uma duplicação de genes na base de Agaricales seguida pela duplicação de h3h e hisps alguns milhões de anos depois. Curiosamente, muitas espécies em um grande clado que codifica hisps são não-bioluminescentes, e os homólogos hisps em espécies bioluminescentes carecem de dois domínios, os domínios cetoredutase e desidratatase(si Appendix, Fig. S6)., É provável que a perda destes domínios funcionais no ancestral comum das espécies bioluminescentes favoreceu a produção de α-pironas por his ancestrais, possivelmente fornecendo o passo final para o surgimento da bioluminescência.Fig. 2. Phylogeny of Agaricales species in which genomes are sequenced. Os retângulos com os nomes dos genes indicam onde luz, h3h, e hisps genes surgiram como resultado da duplicação. Um clado oval na bioluminescência (BL) indica o ancestral comum de todas as espécies bioluminescentes., As cruzes vermelhas marcam os ramos da árvore que eventualmente perderam a bioluminescência. As linhagens de fungos bioluminescentes também são mostradas no mesmo clado. A escala estima o número de substituições por local.

O gene cluster continuou a evoluir dinamicamente após a aquisição da bioluminescência. Pelo menos seis eventos independentes de perda total ou parcial de genes do aglomerado genómico levaram à perda secundária de bioluminescência (Fig. 2). O gene cph foi inserido no aglomerado no clado não-magnóide, possivelmente duas vezes (Fig. 1)., Este padrão de mosaico assemelha-se à história evolutiva das proteínas fluorescentes (24), outra família proteica visualmente relevante com um papel biológico pouco claro, e pode indicar que a vantagem seletiva proporcionada pela bioluminescência nos fungos depende de um contexto ecológico específico ou transitório.as adaptações complexas podem ser uma fonte de soluções biotecnologicamente relevantes., Além de revelar a natureza dos processos fotoquímicos básicos e a evolução das proteínas, as luciferases estão entre os principais tipos de genes de repórter utilizados em vários oleodutos de pesquisa, métodos de diagnóstico e aplicações ambientais (5, 6, 25). Para determinar se uma via bioluminescente fúngica pode fornecer genes repórter, Nós caracterizamos nnLuz in vitro e testamos sua capacidade de produzir luz em sistemas heterólogos.

a proteína nnLuz consiste em 267 aminoácidos e tem a massa molecular de cerca de 28,5 kDa (Apêndice SI, Fig. S7)., Embora a sua localização celular in vivo permaneça desconhecida, a proteína tem uma helix transmembranar N-terminal prevista, consistente com a colocalização da actividade da luciferase com fracções celulares insolúveis em estudos anteriores (22). Quando expresso em P. pastoris, nnLuz foi associado à fracção microssómica (apêndice SI, Fig. S8) e emitiu luz verde com um máximo de 520 nm e espectro idêntico ao de N. nambi micélio (Fig. 3A e SI Apêndice, Fig. S9). O nnluz recombinante emite luz de forma óptima a cerca de pH 8.,0 e temperaturas moderadas, perdendo a sua actividade a temperaturas superiores a 30 ° C (SI Apêndice, Fig. S10).Fig. 3. luciferase fúngica como gene repórter. (A) Photo of P. pastoris cells expressing nnluz, nnh3h, nnhisps, and npgA genes growing in a medium containing caffeic acid. A foto foi tirada em uma câmera NIKON D800, ISO 1600, exposição 8 S. (B) células humanas HEK293NT cotransfectadas com luciferase fúngica (canal verde) e Katushka proteína fluorescente vermelha (canal Violeta). A luciferina fúngica foi adicionada ao meio até à concentração final de 650 µg/mL antes da aquisição da imagem., (C) Imagem de um rato com s.c. injetado murino de carcinoma de células CT26 expressando um nnluz (à esquerda) ou P. pyralis luciferase (à direita), depois eu.p. a administração de uma mistura de fungos (0,5 mg) e firefly (0,5 mg) luciferins. A cor indica a intensidade da luz emitida. D) expressão do gene nnluz num embrião X. laevis. O embrião direito foi microinjetado com a mistura de rhodamina lisina dextrano e nnluz mRNA na fase de duas células, e então, foi microinjetado com luciferina na cavidade blastocoel na fase gastrula., Como um controle, o embrião esquerdo foi microinjetado com rhodamina lisina dextrano apenas na fase de duas células, e então, também foi microinjetado com luciferina na cavidade blastocoel na fase gastrula. O canal Violeta indica fluorescência de rodamina, e o canal verde indica bioluminescência de nnLuz.

Para testar o potencial de nnluz como um gene repórter em heterologous sistemas, testamos a sua expressão em Escherichia coli, P. pastoris, início de Xenopus laevis embriões e células humanas., Embora a luciferase se tenha acumulado principalmente em corpos de inclusão quando expressa em bactérias(Apêndice SI, Fig. S7), todas as células e organismos testados que expressavam nnluz de tipo selvagem eram claramente bioluminescentes quando a 3-hidroxispidina foi adicionada ao meio (Fig. 3 e si Apêndice, figos. S11 e S22). Também comparámos a nnLuz qualitativamente com a luciferase do firefly Photinus pyralis numa imagem de corpo inteiro de xenografts de tumores em ratinhos. We S. C., implantaram quantidades iguais de células do carcinoma do cólon Murino que expressam nnluz ou a pirilampo luciferase sob o mesmo promotor, injectaram uma mistura de pirilampo e luciferinas fúngicas I. p.e obtiveram sinais quase idênticos dos implantes (Fig. 3C).

finalmente, visamos testar se a biossíntese da luciferina pode ser alcançada em organismos sem biossíntese do ácido cafeico. Introdução de três genes adicionais que codificam enzimas da biossíntese do ácido cafeico da tirosina, Rhodobacter capsulatus tirosina amoníaco e dois E., coli 4-hidroxifenilacetato 3-monooxigenase componentes (26), no genoma da estirpe P. pastoris transportando genes npgA, hisps, h3h e luz, resultou numa estirpe que foi autonomamente bioluminescente quando cultivada num meio padrão de levedura (apêndice SI, figos. S12 and S16).assim, sob todas as condições testadas, a Nambi luciferase é funcional em sistemas heterólogos, posicionando-se como um gene repórter promissor, e a luciferina fúngica pode ser sintetizada a partir de aminoácidos aromáticos em outros eucariotas., Além disso, a luciferina fúngica é um composto solúvel em água e permeável em células, e sua reação de emissão de luz não depende da disponibilidade de ATP, tornando o sistema bioluminescente fúngico atraente para inúmeras aplicações em imagens Biomédicas. Além disso, vários análogos de luciferina podem ser usados para melhorar a emissão de luz e sintonizar seus espectros, melhorando a penetração de luz em aplicações de imagens de tecidos profundos (22).em conclusão, apresentamos a cascata enzimática que leva à emissão de luz nos fungos, que é um sistema de bioluminescência eucariótica com biossíntese conhecida da luciferina., Mostrou-se que a luciferina é sintetizada a partir do seu precursor hispidin por N. nambi H3H e que hispidin pode diretamente ser sintetizados pelo hispidin sintase do ácido caféico, uma generalizada celular metabólito com eficiente biossíntese do que foi alcançado em diversos organismos, incluindo industrialmente relevantes estirpes de levedura (26)., Apenas dois enzimática passos dos principais vias metabólicas, o fungal sistema tem um alto potencial para a biologia sintética para criar autonomamente brilhante animais e plantas: as tentativas de desenvolvimento de tais organismos têm até agora sido prejudicada pelo fraco desempenho em eucariotas das bactérias bioluminescentes sistema, o único sistema para o qual luciferina biossíntese era conhecido (27, 28).reconstituição da via bioluminescente fúngica em organismos eucarióticos pode permitir aplicações em que tecidos ou organismos comuniquem alterações no seu estado fisiológico com emissão de luz Autónoma., Poderá também impulsionar o desenvolvimento da próxima geração de arquitectura orgânica (29), onde as plantas brilhantes geneticamente modificadas serão integradas em edifícios e infra-estruturas urbanas. Além disso, com a sua intrigante história evolutiva, uma família de luciferases, e simplicidade geral, o sistema bioluminescente fúngico aqui apresentado é um recreio molecular que oferece inúmeras oportunidades para a investigação básica e aplicada.,

Materiais e Métodos

SI Apêndice inclui os detalhes dos materiais e métodos utilizados neste estudo, incluindo experimentos com embriões de Xenopus, ratos, leveduras, bactérias, células de mamíferos, e bioinformatic análises. As experiências com animais foram aprovadas pelo Comité de ética local da Universidade Nacional de Medicina de investigação Russa de Pirogov e foram realizadas em conformidade com a diretiva 2016/63/UE da União Europeia.genomas of P. stipticus, Lentinula edodes, n. gardneri, N. nambi, and M. citricolor and transcriptomes of P. stipticus, L. edodes, and N., gardneri está disponível no National Center for Bioproject PRJNA476325. Transcriptomas de N. nambi e M. cirticolor, alinhamentos de sequências de genoma de P. pastoris, e alinhamento de sequências de proteínas de luciferases fúngicas estão disponíveis em Figshare (https://figshare.com/articles/A_genetically_encodable_bioluminescent_system_from_fungi/6738953/2). Arquivos usados para reconstruir a árvore de espécies de Agaricales, incluindo alinhamentos crus e aparados e arquivos resultantes RAxML, estão disponíveis no Figshare (https://figshare.com/articles/Species_tree_files/6572117). Sequências de codificação de genes hisps, h3h, luz e cph de Espécies fúngicas estudadas estão disponíveis como conjuntos de dados S1–S4.,agradecemos a Sergey Shakhov pela fotografia e Mary Catherine aime e Rachel Koch por nos permitirem usar os dados obtidos do genoma de G. necrorhiza MCA 3950. A montagem de plasmídeos para experimentos com células de mamíferos e embriões de Xenopus foi apoiada pela Fundação científica russa Grant 17-14-01169, e a caracterização bioquímica da luciferase foi apoiada pela Fundação científica russa Grant 16-14-00052. Esta pesquisa foi apoiada pela Planta LLC e pela Evrogen JSC., Os experimentos em imagens de IVIS e em animais foram realizados usando o equipamento do centro para uso coletivo “Nanobiotechologias médicas” localizado na Universidade Nacional de Medicina de pesquisa da Rússia. Os experimentos foram parcialmente realizados usando o equipamento fornecido pelo Instituto de Bioorganic Chemistry da Academia de Ciências da Rússia (CKP IBCH; apoiado pelo Ministério da Educação e Ciência russo Rfmefi62117x0018). T. G. and M. M.-H., reconhecemos o apoio do Ministério espanhol de Economia e Competitividade Conceder BFU2015-67107 o cofundador pelo Fundo Europeu de Desenvolvimento Regional, do Conselho Europeu de Investigação (ERC) Conceder ERC-2012-StG-310325 âmbito da União Europeia Sétimo Programa-Quadro (FP7/2007-2013, e a União Europeia, o programa Horizonte 2020 Programa de Investigação e Inovação em Marie Sklodowska-Curie Conceder H2020-MSCA-ITN-2014-642095. F. A. K.,o apoio do HHMI Internacional do Início da Carreira de Cientista Programa 55007424, o Ministério espanhol de Economia e Competitividade (MINECO) Concede BFU2012-31329 e BFU2015-68723-P, MINECO Centro de Excelência Severo Ochoa 2013-2017 Conceder SEV-2012-0208, Secretaria d’Universitats eu Recerca del Departamento d Economia i Coneixement de la Generalitat da Agência de Gestão da Universidade e de Bolsas de Pesquisa do Programa de 2014 SGR 0974, os Centros de Recerca de Catalunya Programa da Generalitat de Catalunya, e ERC Conceder 335980_EinME âmbito da União Europeia Sétimo Programa-Quadro (FP7/2007-2013., H.E.W., A.G.O., and C.V.S. acknowledge support from São Paulo Research Foundation Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo Grants 11/10507-0 (to H.E.W.), 10/11578-5 (to A.G.O.), and 13/16885-1 (to C.V.S.).

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