Giardiasis/ (Suomi)

Edited June 2020

the Giardiasis in cats guidelines julkaisi Tim Gruffydd-Jones et al. Journal of Feline Medicine and Surgery 2013, 15, 650-652. Päivityksen on koonnut Corine Boucraut-Baralon.

Synopsis

Giardia on alkueläimen loinen, joka tarttuu kissojen ohutsuoleen ja voi aiheuttaa ripulia. Kissan spesifisinä biotyyppeinä pidetyt biotyypit eivät näytä tarttuvan ihmisiin, mutta zoonoottisia biotyyppejä (eristettyinä ihmisen tapauksista) esiintyy kissoilla usein., Tartunta on yleisintä nuorilla kissoilla, erityisesti monikissataustaisilla. Infektoituneilla kissoilla, joille kehittyy kliinisiä oireita, esiintyy ohutsuoliripulia, johon voi liittyä painon laskua. Diagnoosi infektio on yleensä perustuu käytännössä ELISA-testi ulosteen antigeeni-tai sinkki sulfaatti vaahdotus useita yhdistettyjä ulostenäytteillä. PCR-testit ovat saatavilla, mutta niitä ei käytetä laajalti. Infektio voidaan havaita kliinisesti terveillä kissoilla, joten positiivisten tulosten tulkitseminen ripuloivilla kissoilla vaatii varovaisuutta. Fenbendatsoli tai metronidatsoli ovat hoitoja valinta., Koska sekundaariset suolistomuutokset voivat viedä aikaa, ripuli voi jatkua senkin jälkeen, kun infektio on eliminoitunut.

agentti

kokkidiaanista flagellaattiprotozoan loisesta giardia – G. duodenalis (tunnetaan myös nimillä G. lamblia tai G. intestinalis) on käytetty useita nimiä. Giardia voi tartuttaa useita isäntiä, myös ihmisen. On tunnistettu kahdeksan erilaista molekyylien alatyyppiä, joiden nimenä on A-H (Taulukko 1). F on kissoilla tavattava aliryhmä, kun taas A ja B ovat ihmisen tärkeimmät alaryhmät (Lebbad et al., 2010)., Sen vuoksi tätä ei pidetty zoonoottisena infektiona (Xiao and Fayer, 2008; Ballweber ym., 2010), vaikka lukuisat viimeaikaiset tutkimukset ovat osoittaneet, että A-ja B-alatyyppejä voidaan eristää koiria ja kissoja, joskus useammin kuin F alatyyppi, joka pidetään kissan-erityinen.

Taulukko 1. Eri lajeja infektoivan Giardia duodenaliksen geneettiset kokoonpanot (Thompsonin ja Monisin tarkistettu nimistö, 2012)

elinkaari

loisella on suora elinkaari., Se elää kissan alemmassa ohutsuolessa trofotsoiittimuodossaan, kiinnittyneenä suolen seinään. Se replikoituu binäärisellä fissiolla muodostaen koteloituneen muodon, joka kulkeutuu ulosteeseen trofotsoiittien lisäksi.

Fig. 2. Giardia lamblian elinkaari. Wikipedia, public domain

Epidemiology

Giardia välittyy ulosteen ja suun kautta. Vaikka trofotsoiitit erittyvät ulosteeseen, ne eivät säily pitkään ympäristössä eivätkä todennäköisesti aiheuta infektiota., Sen sijaan kystat ovat erittäin tarttuvia ja onnistunut siirto vaatii vain pienen määrän nautittavaksi. Kystat voivat säilyä ympäristössä jopa useita kuukausia ihanteellisissa olosuhteissa, joten epäsuoraa tarttumista ulosteen välityksellä voi esiintyä.

epidemiologiset tutkimukset eri maissa ja otanta eri kissapopulaatioista ovat osoittaneet vaihtelevan esiintyvyyden. Se on vaihdellut käytetyn diagnostisen seulontatestin mukaan,mutta yleensä esiintyvyys on vaihdellut 1-20 prosentista (Paoletti et al., 2010; Dado et al., 2012; Sotiriadou ym., 2013; Hintey et al.,, 2015; Pallant ym., 2015; Piekarska ym., 2016; Gil et al., 2017; Kostopoulou ym., 2017). Tuoreissa espanjalaistutkimuksissa tartuntojen esiintyvyys kissoilla on vähäinen verrattuna koiriin (de Lucio et al., 2017; Gil et al., 2017). Eräässä tuoreessa saksalaistutkimuksessa coproantigenia osoittavaa ELISA-testiä käyttäneillä koirilla ja kissoilla esiintyvyys oli 30% suurempi ja kissoilla 17% suurempi (Sommer et al., 2018)

Vuonna meta-analyysi tutkimuksessa, on osoitettu, että esiintyvyys oli korkeampi kissojen ripuli verrattuna terveiden kissojen (Bouzid et al., 2015)., Esiintyvyys oli suurempi myös nuorilla kissoilla (Bouzid et al., 2015; Pallant ym., 2015; Kostopoulou ym., 2017) monissa tutkimuksissa ja puhdasrotuisissa kissoissa yhdessä saksalaisessa tutkimuksessa (Pallant et al., 2015). Esiintyvyys suojissa näyttää olevan suurempi kuin omistetuissa kissoissa (Hintey et al., 2015; de Lucio ym., 2017; Gil et al., 2017).

patogeneesi

loinen voi aiheuttaa ohutsuolen epiteelisolujen vaurioitumista ja menetystä aiheuttaen tulehdusreaktion. Suolisto voi puhjeta, mikä johtaa imeytymishäiriöön.,

Kliiniset merkit

Nuoret kissat ovat alttiimpia sekä infektio ja sairauden, useimmat kliiniset infektiot esiintyvät kissat alle yhden vuoden iässä. Monissa tapauksissa Giardia-infektio ei liity oireinen tauti, ja korostaa, että tämä loinen kuten ripulia taudinaiheuttaja kissoilla ei ole selvä. Kokeelliset infektiot ovat aiheuttaneet kliinisiä oireita, mutta eivät kaikissa tapauksissa. Mekanismi, jolla ripulia indusoidaan, on epäselvä, mutta sen arvellaan liittyvän imeytymishäiriöön. Tämä voi liittyä laihtuminen, joka on merkittävä ominaisuus joissakin tapauksissa., Ripuli on tyypillisesti ohutsuoliluonteista ja siinä kulkee nestemäisiä tai puolinesteitä ulosteita, mutta joskus ripuli on isohko suolisto, joka sisältää limaa/verta. Taudin kliininen kulku voi kestää viikkoja.

immuniteetti

immuunivaste Giardia-infektiolle on kissoilla huonosti ymmärretty. Tietojen perusteella infektio muita lajeja, se on olettaa, että solujen immuniteetti ja IgA-vaste ovat avain tarjoamalla suojaava immuniteetti.,

diagnoosi

tartunta todetaan suoralla ulosteen smears-tutkimuksella (märkätutkimuksella), ulosteen flotaatiomenetelmillä, ulosteen Elisa-antigeenimäärityksillä, suoralla immunofluoresenssilla ulosteen smears-ja PCR-tutkimuksissa.

Trofotsoiitit voidaan tunnistaa tuoreista ulostepesäkkeistä. He ovat liikkumattomia, joilla on liikkuva toiminta. Pieni määrä juuri läpäissyt ulostetta tai limaa on sekoitettu tippa suolaliuosta objektilasille, peitetty peitinlasin ja välittömästi tutkitaan mikroskoopilla suurennos x100. Lisätarkastus x400: ssa mahdollistaa lopullisen tunnistamisen., On myös mahdollista käyttää mikroskooppinen tutkimus pohjukaissuolen aspiraatit kerätään endoskooppisen ohutsuolen intubaatio trofotsoites. Giardialla on kuitenkin taipumus asua kauempana kissojen ohutsuolessa endoskooppisen intubaation ulottumattomissa (McDowall ym., 2011).

sinkkisulfaattiflotaatiomenetelmää suositellaan ulosteen seulontaan. Erittymistä kystat on arvaamaton ja siksi useita (yleensä kolme) ulostenäytteillä (kerätään peräkkäin tai vuorotellen päivää) tulisi seuloa., Rutiininomaiset tyydyttyneet suola-tai sakkaroosimenetelmät ovat epätyydyttäviä, koska ne johtavat kystien vääristymiseen.

suoralla fluoresoivalla vasta-ainetekniikalla on mahdollista havaita kystat ulosteen sivelyissä, joskaan tätä testiä ei käytetä laajalti Euroopassa.

ELISA-tekniikoita antigeenin havaitsemiseksi ulosteessa on saatavilla, mukaan lukien käytännön SNAP-testi (IDEXX Ltd.), mutta nämä menetelmät eivät näytä olevan herkempiä kuin huolellinen ulosteseulonta (Barr et al., 1992)., Tutkimukset ovat osoittaneet, että antigeenin Elisa-havaitseminen korreloi hyvin suorien fluoresoivien vasta-aineiden seulontatulosten kanssa (Cirak ja Bauer, 2004).

PCR-testejä on saatavilla, mutta niitä ei käytetä laajalti. Niiden etuna on, että ne pystyvät tunnistamaan läsnä olevan alatyypin. Ensimmäisissä PCR-pohjaisissa tutkimuksissa havaittiin suuri osa positiivisista (jopa 80%), mikä on herättänyt huolta siitä, että PCR-testeissä voitaisiin havaita infektioita, jotka eivät ole kliinisesti merkityksellisiä (McGlade et al., 2003)., Giardian havaitsemiseen on kuitenkin nyt saatavilla kvantitatiivisia reaaliaikaisia PCR-määrityksiä, ja viimeaikaiset tutkimukset antoivat samanlaisia esiintyvyysasteita kuin muut tekniikat (Yang et al., 2015).

ulosteen kelluminen menetelmä oli standardi testi käytetty aiemmin, mutta käytännön ulosteen antigeenitesti näyttää olevan yhtä herkkä ja spesifinen, ja se on kätevä tehdä. Ulostepesäkkeiden tutkiminen on halpaa ja sillä on etu tunnistaa muita mahdollisia loisia – mutta se ei ole suosittu käytännössä ja on vähemmän herkkä (Olson et al., 2010).,

pragmaattinen lähestymistapa, jota lääkärit usein käyttävät testauksen vaihtoehtona, on arvioida hoitovastetta. Tätä lähestymistapaa olisi kuitenkin vältettävä, koska suolistoflooran muuttuminen antibiooteilla on riski. Lisäksi co-infektioita muita loisia, kuten Tritrichomonas foetus-tai Cryptosporidium ovat yleisiä ja hoito, tarvittaessa, olisi mukautettava, jotta analyysien tulokset.,

Hoito

Koska mahdollinen ulkonäkö anti-bakteeri-ja parasiticide vastus, se ei ole suositeltavaa käsitellä oireetonta Giardia-positiivisia kissoja, erityisesti metronidatsoli tai fenbendazole.

standardi hoito Giardia-infektio on yleensä ollut imidatsoli, yleensä fenbendazole (Panacur) annetaan 50 mg/kg 5-7 päivää (Barr et al., 1994; Keith ym., 2003). Fenbendatsolia voidaan käyttää raskaana oleville kuningattarille., Metronidatsoli on vaihtoehto, ja alkuperäinen suositus oli käyttää sitä annoksella 50 mg/kg viiden päivän ajan, mutta tämän lääkkeen ei pitäisi käyttää raskaana oleville queens. Tämä annos lisää haittavaikutusten riskiä-keskushermostoon kohdistuva toksisuus, joka aiheuttaa heikkoutta, ataksiaa, desorientaatiota ja kouristuksia. Viime aikoina on ehdotettu, että päivittäinen annos 25 mg/kg on tehokas ja tuskin aiheuttaa haittavaikutuksia., Joissakin vaikeissa tapauksissa, joissa on monia tartunnan saaneita kissoja, toinen hoito voi olla tarpeen ja siinä tilanteessa, yhdistelmä fenbendatsolia ja metronidatsolia voi olla tehokas. On kuitenkin ehdotettu, että toisen kierroksen hoito fenbendatsolilla voisi lisätä E. coli-antibioottiresistenssin (Tysnes et al., 2016).

vaihtoehtona on käyttää Ronidatsolia, joka on osoittautunut tehokkaaksi giardiaasia vastaan koirilla (Fiechter ym., 2012) ja kissoja (Sanzani et al., 2016). Ronidatsolia käytetään nykyisin myös kissojen Trichomonas foetus-infektion hoitoon.,

oireettomien kissojen hoitamista ei suositella, mutta monikissaisissa ympäristöissä, joissa kissoilla on kliinisiä oireita, saattaa olla tehokkaampaa hoitaa kaikkia yhdessä eläviä eläimiä (koiria ja kissoja) (ESCCAP-suositus). Lisäksi on hoidettava positiivisia kissoja, jotka elävät kosketuksessa immuunipuutteisten ihmisten kanssa.

sekä hoitoon tartunnan kissojen, se on kriittinen hallita ympäristöä estää super-infektio ja uudelleen-infektio hoidon jälkeen.,

Ennaltaehkäisy ja hygienia

likaisissa ympäristöissä, intensiivinen puhdistus ja käyttö 4-kloori-M-kresoli (Chlorocresol) tai kvaternaariset ammoniumyhdisteet ovat tehokkaita estämään uudelleen infektio ja infektion leviämisen multi-kissa taloa. Tartunnan saaneiden eläinten ulosteet on hävitettävä ja kulhot ja pinnat puhdistettava ja desinfioitava kvaternaarisilla ammoniumyhdisteillä. Jos mahdollista, kissan siirtäminen toiseen huoneeseen voi myös auttaa välttämään uudelleen tarttumista.,

Pesu/sampoolla eläimiä, tai ainakin peräaukon alueella, jossa on shampoo, joka sisältää klooriheksidiini alussa ja lopussa hoito voi auttaa poistamaan kystat.

parasiitin kulkeutumisen välttämiseksi voidaan ehdottaa testausta uusille kissoille, jotka siirtyvät monikissaympäristöön. Tämä voidaan tehdä karanteeniaikana.

hoitohenkilökunnan (sairaanhoitajat, eläinlääkärit, eläinlääketieteen opiskelijat) tulee olla tietoinen hygieniasäännöistä ja noudattaa niitä.

inaktivoituihin trofotsoiitteihin perustuvaa rokotetta on käytetty Yhdysvalloissa, mutta ei Euroopassa; sitä ei ole enää saatavilla., Sitä käytettiin sekä hoitoon että ehkäisyyn.

Zoonoottisen riskin

monet Euroopassa Saksassa, Italiassa, Espanjassa, Kreikassa ja Puolassa tehdyt tutkimukset osoittivat, että kissoilla on aliryhmä a (Paoletti et al., 2010; Dado et al., 2012; Sotiriadou ym., 2013; Sanzani et al., 2014; Pallant ym., 2015; Piekarska ym., 2016; Kostopoulou ym., 2017; Gil et al., 2017), joko yksin tai dual-infektio (A ja F; Dado et al., 2012). Genotyyppi B on tunnistettu myös kissoilla (Pallant et al., 2015; Kostopoulou ym.,, 2017), mutta A on eri eurooppalaisten tutkimusten ja kanadalaisen (McDowall et al., 2011). Zoonoottisen giardian suojeluriski näyttää olevan suurempi nuorilla kissoilla <1 vuosi vanhempiin kissoihin verrattuna.

viimeaikainen tutkimus tunnistaa zoonoosien kokoonpanokohtien 3 Giardia positiivinen koirat ja 2 positiivinen kissat asuvat Alava alueella Espanjassa, mikä viittaa siihen, että kotitalouksien siirto Giardia lemmikkejä, jos se tapahtuu, on harvoin. Tässä tutkimuksessa G., duodenalis-valmisteen osoitettiin olevan 29% (16/55) koirista ja 5,9% kissoista (de Lucio et al., 2017), ja zoonoottisen assemblage A: n esiintyminen havaittiin kissoilla suojassa samalla alueella (Gil et al., 2017).

toisaalta, tutkimuksessa lapsilla huono ympäristöolosuhteet Slovakia osoitti, että kissa erityisiä assemblage F on läsnä ihmisillä Euroopassa (Pipikova et al., 2018).,

tähän mennessä ei ole tehty tutkimusta, jossa olisi osoitettu giardian suoraa siirtymistä kissoista ihmisiin ja tärkeimmät saastumisen lähteet ihmisille näyttävät olevan raa ’ at vihannekset ja vesi. Lisäksi Giardia-infektion esiintyvyys oireettomilla kissoilla on useimmissa Euroopan maissa vähäistä.

mutta vaikka ei ole todisteita giardian suorasta siirtymisestä kissoista ihmisiin ja koska zoonoottisia lajeja havaitaan joskus tartunnan saaneilla (nuorilla) kissoilla, giardian zoonoottista potentiaalia kissoilla olisi harkittava silloin, kun nuoret kissat elävät immuunipuutteisten ihmisten kanssa., Sen vuoksi suositellaan tällaisten kissojen testaamista.

kuittaus

ABCD Europe kiittää Boehringer Ingelheimin (ABCD: n perustajasponsori) ja Virbacin tukea.

Ballweber LR, Xiao L, Bowman DD, Kahn G, Cama VA (2010): Giardiaasi koirilla ja kissoilla: päivitys epidemiologiasta ja kansanterveyden merkityksestä. Trendit Parasitol 26, 180-189.

Barr SC, Bowman DD, Erb HN (1992): arviointi kahdesta testimenetelmästä giardiaasin diagnosoimiseksi koirilla. Am Jvet Res 53, 2028.,

Barr SC, Bowman DD, Heller RL (1994): fenbendatsolin teho giardiaasia vastaan koirilla. Am Jvet Res 55, 988-990.

Bouzid M, Halai K, Jeffreys D, Hunter PR (2015): Giardia-infektion esiintyvyys koirilla ja kissoilla, systemaattinen katsaus ja Meta-analyysi esiintyvyystutkimuksista ulostenäytteistä. Eläinlääkäri Parasitol 207, 181-202.

Cirak VY, Bauer C (2004): Comparison of conventional coproscopical methods and commercial coproantigen ELISA kits for the detection of Giardia and Cryptosporidium infections in dogs and cats. Berl Munch Tierarztl Wochenschr 117, 410-413.,

Dado D, Montoya a, Blanco MA, Miró G, Saugar JM, Bailo B, et al (2012): Giardia duodenaliksen esiintyvyys ja genotyypit koirista Espanjassa: mahdollinen zoonoottinen siirto ja kansanterveyden merkitys. Parasitol Res 111, 2419-2422.

de Lucio a, Bailo B, Aguilera M, Cardona GA, Fernández-Crespo JC, Carmena D (2017): zoonoottisten Giardia duodenalis-ja Cryptosporidium spp: n kotitalouksissa tapahtuvaa tartuntaa tukevaa molekyylien epidemiologista näyttöä ei ole. lemmikkikoirilta ja kissoilta Álavan maakunnassa Pohjois-Espanjassa. Acta Trop 170, 48-56.,

Fiechter R, Deplazes P, Schnyder M, et al (2012): Giardia-infektioiden torjunta Ronidatsolilla ja intensiivinen hygienian hallinta koiratarhassa. Eläinlääkäri Parasitol 187, 93-98.

gil H, Cano L, de Lucio a, Bailo B, de Mingo MH, Cardona GA, Fernández-Basterra JA, Aramburu-Aguirre J, López-Molina N, Carmena D (2017): Giardia duodenaliksen ja Cryptosporidium spp: n havaitseminen ja molekyylien monimuotoisuus. suojaisissa koirissa ja kissoissa Pohjois-Espanjassa. Infektoi Genet Evol 50, 62-69.,

Hinney B, C edererin tilalle tämän, Stengl C, Wilding K, Štrkolcová G, Harl J, Flechl E, Fuehrer HV, Joachim A (2015): Suolisto-alkueläimet kissojen ja niiden zoonoottinen potentiaali – alan tutkimus Itävallasta. Parasitol Res 114, 2003-2006.

Keith CL, Radecki SV, Lappin JÄSEN (2003): Arviointi fenbendazole hoitoon Giardia-infektio kissojen samanaikaisesti tartunnan Cryptosporidium parvum. Am Jvet Res 64, 1027-1029.,

Kostopoulou D, Claerebout E, Arvanitis D, Ligda P, Voutzourakis N, Casaert s, Sotiraki S (2017): runsaus, zoonoottiset mahdollisuudet ja suoliston parasitismin riskitekijät koirapopulaatioissa ja kissapopulaatioissa: Kreetan skenaario, Kreikka. Parasitvektorit 10, 43.

Lebbad M, Mattson JG, Christensson B, Ljungstrom B, Backhans A, Andersson JO, Svard SG (2010): Alkaen hiirtä hirvi: multilocus genotyypin Giardia eristää eri eläinlajeja. Eläinlääkäri Parasitol 168, 231-239.,

McDowall RM, Muuttohaukka NIIN, Leonard EK, Lacombe C, Järvi M, Rebelo AR, et al (2011): Arviointi zoonoottinen potentiaali Giardia duodenalis ulosteen näytteitä koirien ja kissojen Ontariossa. Can Vet J 12, 1329-1333.

McGlade TR, Robertson ID, Elliot AD, Thompson RC (2003): PCR: n kissoilla havaittu giardian suuri esiintyvyys. Eläinlääkäri Parasitol 110, 197-205.

Olson ME, Leonard NJ, Srout J (2010): Giardia-infektion esiintyvyys ja diagnoosi koirilla ja kissoilla ulosteen antigeenitestillä ja ulosteen mustamaalauksella. Can Eläinlääkäri J 51, 640-642.,

Pallant L, Barutzki D, Schaper R, Thompson RC (2015):.Giardia-lajien ja genotyyppien aiheuttamien infektioiden epidemiologia hyvin hoidetuilla koirilla ja kissoilla Saksassa. Parasitvektorit 8, 2.

Paoletti B, Otranto D, Weigl S, Giangaspero A, Di Cesare a, Traversa D (2010): giardian ja Cryptosporidiumin esiintyvyys ja geneettinen Luonnehdinta kissoilla Italiasta. Res Vet Sci 91, 397-399.

Piekarska J, Bajzert J, Gorczykowski M, Kantyka M, Podkowik M (2016): Giardia duodenalis isolaattien Molekyylitunnus kotieläiminä pidetyistä koirista ja kissoista Wroclawissa Puolassa., Ann Agric Environ Med 23, 410-415.

Pipiková J, Papajová I, Majláthová V, Šoltys J, Bystrianska J, Schusterová I, Vargová V (2018): ensimmäinen raportti Giardia duodenalis assemblage F In slovakialaiset lapset elävät köyhissä ympäristöolosuhteissa. J Microbiol Immunol Infektoi 53, 148-156.

Sommer MF, Rupp P, Pietsch M, Kaspar A, Beelitz P (2018): Giardia valitun populaation koirien ja kissojen Saksassa – diagnostiikka, coinfections ja kokoonpanokohtien. Eläinlääkäri Parasitol 249, 49-56.,

Sotiriadou I, Pantchev N, Gassmann D, Karanis P (2013): giardian ja Cryptosporidiumin Molekyylitunnus koirista ja kissoista. Loinen 20, 8.

Thompson RC, Monis P (2012): Giardia – perimästä proteomeen. Adv Parasit 78, 57-95.

Tysnes KR, Luyckx K, Cantas L, Robertson Lj (2016): kissan giardiaasin hoito ripulin puhjetessa kissalassa: mahdolliset vaikutukset fekaaliseen Escherichia coli-resistenssiin. J Feline Med Surg 18, 679-682.,

Xiao l, Fayer R (2008): Cryptosporidiumin ja giardian lajien ja genotyyppien Molekyylinluonnehdinta ja zoonoottisen transmission arviointi. Int J Parasitol 38, 1239-1255.

Yang R, Ying JL, Monis P, Ryan U (2015): Cryptosporidiumin ja giardian Molekyyliluonnehdinta kissoilla (Felis catus) Länsi-Australiassa. Exp Parasitol 155, 13-18.

Zanzani SA, Gazzonis AL, Scarpa P, Berrilli F, Manfredi MT (2014): omistettujen koirien ja kissojen Suolistoloisia suurkaupunkialueilta ja mikropoliitilta: esiintyvyys, zoonoottiset riskit ja lemmikkieläinten omistajan tietoisuus Pohjois-Italiassa., Biomed Res Int.: 2014: 696-508.

Leave a Comment