redigerad juni 2020
riktlinjerna för Giardiasis hos katter publicerades av Tim Gruffydd-Jones et al. i Journal of Feline Medicin och Kirurgi 2013, 15, 650-652. Den här uppdateringen har sammanställts av Corine Boucraut-Baralon.
Synopsis
Giardia är en protozoal parasit som infekterar tunntarmen hos katter och kan orsaka diarré. De biotyper som anses vara kattspecifika biotyper verkar inte infektera människor, men zoonotiska biotyper (isolerade från humana fall) finns ofta hos katter., Infektion är vanligast hos unga katter, särskilt från flera katt bakgrunder. Infekterade katter som utvecklar kliniska tecken visar diarré i tunntarmen och kan drabbas av viktminskning. Diagnos av infektion är vanligtvis baserad på en i praktiken ELISA för fekal antigen eller zinksulfat flotation av flera poolade fekala prover. PCR-test är tillgängliga men används inte i stor utsträckning. Infektion kan påvisas hos kliniskt friska katter; därför kräver tolkning av positiva resultat hos katter med diarré vård. Fenbendazol eller metronidazol är de valfria behandlingarna., Eftersom sekundära tarmförändringar kan ta tid att lösa, kan diarré fortsätta även efter att infektion har eliminerats.
Agent
flera namn har använts för den koccidiska flagellat protozoiska parasiten giardia – G. duodenalis (även känd som G. lamblia eller G. intestinalis). Giardia kan infektera ett antal värdar, inklusive människan. Åtta olika molekylära subtyper har identifierats, betecknade A-H (Tabell 1). F är undergruppen som ses hos katter, medan A och B är de viktigaste undergrupperna i människan (Lebbad et al., 2010)., Detta ansågs därför inte vara en zoonotisk infektion (Xiao och Fayer, 2008; Ballweber et al., 2010), även om många nya studier har visat att A och B-subtyper kan isoleras från hundar och katter, ibland oftare än F-subtypen som anses vara kattspecifik.
Tabell 1. Genetiska sammansättningar (subtyper) av Giardia duodenalis som infekterar olika arter (reviderad nomenklatur av Thompson och Monis, 2012)
livscykel
parasiten har en direkt livscykel., Det bor i kattens nedre tunntarm i sin trofozoitform, vidhäftande mot tarmväggen. Den replikerar genom binär fission för att producera den inkapslade formen, som passeras i feces utöver trofozoiterna.
Fig. 2. Livscykel Giardia lamblia. Wikipedia, public domain
epidemiologi
Giardia överförs av fekal-oral rutt. Även om trofozoiter utsöndras i avföringen, överlever dessa inte länge i miljön och är osannolikt att orsaka infektion., Däremot cystor är mycket smittsam och framgångsrik överföring kräver endast ett litet antal som ska intas. Cystorna kan överleva i miljön i upp till flera månader under idealiska förhållanden och så indirekt överföring via fekal förorening kan uppstå.
epidemiologiska studier i olika länder och provtagning av olika kattpopulationer har visat en varierande prevalens. Det har varierat enligt det diagnostiska screeningtestet som används, men i allmänhet har prevalensen varierat från 1-20% (Paoletti et al., 2010; Dado et al., 2012; Sotiriadou m.fl. 2013; för Hinney et al., År 2015; Pallant et al. År 2015; Piekarska et al., 2016; Gil et al., Och med 2017. Kostopoulou et al., 2017). I de senaste spanska studierna är förekomsten av infektion hos katter låg jämfört med hundar (De Lucio et al., Och med 2017. Gil et al., 2017). I en nyligen genomförd studie från Tyskland visade prevalensen hos hundar och katter som använde ett ELISA-test som detekterade coproantigen en högre prevalens på 30 respektive 17% hos hundar respektive katter (Sommer et al., 2018)
i en metaanalysstudie visades att prevalensen var högre hos katter med diarré jämfört med friska katter (Bouzid et al., 2015)., Prevalensen var också högre hos unga katter (Bouzid et al. År 2015; Pallant et al. År 2015; Kostopoulou et al., 2017) i många studier och i renrasiga katter i en tysk studie (Pallant et al., 2015). Prevalensen i skyddsrum verkar vara högre än hos ägda katter (Hinney et al. År 2015; de Lucio et al., Och med 2017. Gil et al., 2017).
patogenes
parasiten kan orsaka skador på och förlust av epitelcellerna i den nedre tunntarmen, vilket framkallar ett inflammatoriskt svar. Det kan vara avtrubbning av tarm villi som leder till malabsorption.,
kliniska tecken
unga katter är mer mottagliga för både infektion och tillhörande sjukdom, med de flesta kliniska infektioner som uppträder hos katter under ett års ålder. Många fall av Giardia-infektion är inte förknippade med öppen sjukdom, och betydelsen av denna parasit som diarré patogen hos katter är inte tydlig. Experimentella infektioner har inducerat kliniska tecken, men inte i alla fall. Den mekanism genom vilken diarré induceras är oklar, men anses vara relaterad till malabsorption. Detta kan åtföljas av viktminskning, vilket är en framträdande funktion i vissa fall., Diarrén är typiskt av tunntarmskaraktär med passage av flytande eller halvvätskig avföring, men ibland är diarrén stortarm som innehåller slem / blod. Den kliniska kursen av sjukdomen kan vara i veckor.
immunitet
immunsvaret mot Giardia-infektion är dåligt förstått hos katter. Baserat på information från infektion hos andra arter antas det att cellulär immunitet och IgA-svaret är nyckeln till att ge skyddande immunitet.,
diagnos
infektionen diagnostiseras med direkt undersökning av fekala utstryk (wet mount examination), fekala flotationsmetoder, fekal ELISA antigenanalys, direkt immunofluorescens på fekala utstryk och PCR.
trofozoiter kan identifieras i färska fekala utstryk. De är rörliga med en rullande åtgärd. En liten mängd färsk avföring eller slem blandas med en droppe saltlösning på en mikroskopskiva, täckt med ett täckglas och omedelbart undersöks under ett mikroskop vid en förstoring av x100. Ytterligare undersökning vid x400 möjliggör definitiv identifiering., Det är också möjligt att använda mikroskopisk undersökning av duodenal aspirater uppsamlade under endoskopisk tunntarmen intubation för trofozoiter. Giardia tenderar dock att bo längre ner i tunntarmen hos katter, utom räckhåll för endoskopisk intubation (McDowall et al., 2011).
en zinksulfatflotationsmetod rekommenderas för fekal screening. Utsöndring av cystor är oregelbunden och därför bör flera (vanligtvis tre) fekala prover (uppsamlade på varandra följande eller alternativa dagar) screenas., Rutinmättade salt-eller sackarosmetoder är otillfredsställande eftersom de leder till snedvridning av cysterna.
det är också möjligt att använda en direkt fluorescerande antikroppsteknik för att detektera cystor i fekala smuts, även om detta test inte används i stor utsträckning i Europa.
ELISA-tekniker för detektering av antigen i feces finns tillgängliga, inklusive ett SNÄPPTEST i praktiken (IDEXX Ltd.), men dessa metoder verkar inte vara mer känsliga än noggrann fekal screening (Barr et al., 1992)., Studier har visat att ELISA-detektion av antigen korrelerar väl med direkta fluorescerande antikroppsscreeningresultat (Cirak och Bauer, 2004).
PCR-test är tillgängliga men används inte i stor utsträckning. De har fördelen att kunna identifiera subtyp närvarande. De första PCR – baserade studierna avslöjade en hög andel positiva (upp till 80%), vilket har väckt oro över att PCR-test kan upptäcka infektioner som inte är kliniskt relevanta (McGlade et al., 2003)., Kvantitativa PCR-analyser i realtid är nu tillgängliga för Giardia-upptäckt och nya studier gav liknande prevalensfrekvens som andra tekniker (Yang et al., 2015).
fekal flotationsmetoden var det standardtest som tidigare användes, men det i praktiken fekala antigentestet verkar vara lika känsligt och specifikt och är praktiskt att utföra. Undersökning av fekal Smuts är billigt och har fördelen att identifiera andra potentiella parasiter – men det är inte populärt i praktiken och är mindre känsligt (Olson et al., 2010).,
ett pragmatiskt tillvägagångssätt som ofta används av utövare som ett alternativ till testning är att bedöma svaret på behandlingen. Detta tillvägagångssätt bör dock undvikas på grund av risken för att tarmfloran ändras med antibiotika. Dessutom är saminfektioner med andra parasiter som tritrichomonas foster eller Cryptosporidium vanliga och behandlingen bör vid behov anpassas till analysresultaten.,
behandling
på grund av det potentiella utseendet för antibakteriell och parasiticidresistens rekommenderas det inte att behandla asymptomatiska Giardia-positiva katter, särskilt med metronidazol eller fenbendazol.
standardbehandlingen för Giardia-infektion har i allmänhet varit en imidazol, vanligtvis fenbendazol (Panacur) som gavs 50 mg/kg i 5-7 dagar (Barr et al., 1994; Keith et al., 2003). Fenbendazol kan användas till gravida drottningar., Metronidazol är ett alternativ, och den ursprungliga rekommendationen var att använda den i en dos av 50 mg/kg i fem dagar, men detta läkemedel ska inte användas i gravida drottningar. Denna dos medför en ökad risk för biverkningar – centrala nervsystemet toxicitet som orsakar svaghet, ataxi, desorientering och anfall. Nyligen har det föreslagits att en daglig dos på 25 mg/kg är effektiv och sannolikt inte inducerar biverkningar., I vissa svåra fall med många infekterade katter kan en andra behandling vara nödvändig och i den situationen kan en kombination av fenbendazol och metronidazol vara effektiv. Det har dock föreslagits att en andra runda behandling med fenbendazol kan förstärka uppkomsten av E. coli antibiotikaresistens (Tysnes et al., 2016).
ett alternativ är att använda Ronidazol som har visat sig vara effektivt mot Giardiasis hos hundar (Fiechter et al., 2012) och katter (Zanzani m.fl., 2016). Ronidazol används också för närvarande för att behandla Trichomonas fosterinfektion hos katter.,
det rekommenderas inte att behandla asymtomatiska katter, men i flerkattsmiljöer där katter har kliniska tecken kan det vara effektivare att behandla alla djur (hundar och katter) som lever tillsammans (ESCCAP-rekommendation). Dessutom bör positiva katter som lever i kontakt med immunkompromiserade personer behandlas.
förutom att behandla de infekterade katterna är det viktigt att hantera miljön för att förhindra superinfektion och återinfektion efter behandling.,
förebyggande och hygien
i förorenade miljöer är intensiv rengöring och användning av 4-klor-m-kresol (Klorkresol) eller kvaternära ammoniumföreningar effektiva för att förhindra återinfektion och spridning av infektionen i flera katthus. Avföring från smittade djur bör förstöras och skålar och ytor ska rengöras och desinficeras med kvaternära ammoniumföreningar. Om möjligt kan flytta katten till ett annat rum också bidra till att undvika återinfektion.,
tvättning / schamponering av djur, eller åtminstone perianalområdet, med schampo innehållande klorhexidin i början och slutet av behandlingen kan bidra till att eliminera cysterna.
testning kan föreslås för nya katter som kommer in i en multi-cat miljö för att undvika införande av parasiten. Detta kan göras under karantänperioden.
vårdpersonal (sjuksköterskor, veterinärer, veterinärer) bör vara medveten om och bör respektera hygienreglerna.
ett vaccin baserat på inaktiverade trofozoiter har använts i USA men inte i Europa; det är inte längre tillgängligt., Det användes för behandling såväl som förebyggande.
zoonotisk risk
många europeiska studier utförda i Tyskland, Italien, Spanien, Grekland och Polen visade närvaron av undergrupp A hos katter (Paoletti et al., 2010; Dado et al., 2012; Sotiriadou m.fl., 2013; Zanzani m.fl., 2014; Pallant et al. År 2015; Piekarska et al., 2016; Kostopoulou et al., Och med 2017. Gil et al., 2017), antingen ensam eller som en dubbel infektion (A och f; Dado et al., 2012). Genotyp B har också identifierats hos katter (Pallant et al. År 2015; Kostopoulou et al.,, 2017), Men A är vanligast, enligt de olika europeiska studierna och en kanadensisk (McDowall et al., 2011). Risken för att hysa zoonotisk Giardia verkar vara högre hos unga katter < 1 år jämfört med äldre katter.
en ny studie misslyckades med att upptäcka zoonotiska sammansättningar hos 3 Giardia-positiva hundar och 2-positiva katter som bor i Alava-regionen i Spanien, vilket tyder på att hushållsöverföring av Giardia av husdjur, om det inträffar, är sällsynt. I denna studie inga samtidiga infektioner hos människa och hund/katt värdar av G., duodenalis visades även om 29% (16 / 55) av hundar och 5, 9% av katterna testade positivt (de Lucio et al., 2017), och förekomsten av zoonotisk montering a upptäcktes hos katter i ett skydd i samma region (Gil et al., 2017).
å andra sidan visade en studie på barn från dåliga miljöförhållanden i Slovakien att kattspecifik montering F förekommer hos människor i Europa (Pipikova et al., 2018).,
hittills finns det ingen studie som visar direkt överföring av Giardia från katter till människor och de viktigaste föroreningskällorna för människor verkar vara råa grönsaker och vatten. Dessutom är förekomsten av Giardia-infektion hos asymptomatiska katter låg i de flesta europeiska länder.
Även om det inte finns några bevis för direkt överföring av Giardia från katter till människor och med tanke på att zoonotiska arter ibland upptäcks hos infekterade (unga) katter, bör Giardia: s zoonotiska potential hos katter beaktas när unga katter lever med nedsatt immunförsvar., Testning av sådana katter rekommenderas därför.
bekräftelse
ABCD Europe erkänner tacksamt stödet från Boehringer Ingelheim (ABCD: s grundare sponsor) och Virbac.
Ballweber LR, Xiao l, Bowman dd, Kahn G, Cama VA (2010): Giardiasis hos hundar och katter: uppdatering om epidemiologi och folkhälsobetydelse. Trender Parasitol 26, 180-189.
Barr SC, Bowman DD, Erb HN (1992): utvärdering av två testprocedurer för diagnos av giardiasis hos hundar. Am J Vet Res 53, 2028.,
Barr SC, Bowman DD, Heller RL (1994): effekt av fenbendazol mot giardiasis hos hundar. Am J Vet Res 55, 988-990.
Bouzid M, Halai K, Jeffreys D, Hunter PR (2015): förekomsten av Giardia-infektion hos hundar och katter, en systematisk granskning och metaanalys av prevalensstudier från avföringsprover. Vet Parasitol 207, 181-202.
Cirak VY, Bauer C (2004): Jämförelse av konventionell coproscopical metoder och kommersiella coproantigen ELISA-kit för detektion av Giardia och Cryptosporidium-infektioner hos hundar och katter. Berl Munch Tierarztl Wochenschr 117, 410-413.,
Dado D, Montoya En, Blanco MA, Miró G, Saugar JM, Bailo B, et al (2012): Förekomst och genotyper av Giardia duodenalis från hundar i Spanien: det är möjligt zoonotisk överföring och betydelse för folkhälsan. Parasitol Res 111, 2419-2422.
de Lucio En, Bailo B, Aguilera M, Cardona GA, Fernández-Crespo JC, Carmena D (2017): Ingen molekylär epidemiologiska bevis för att stödja hushåll överföring av zoonotiska Giardia duodenalis och Cryptosporidium spp. från hundar och katter i provinsen Álava, norra Spanien. Acta Trop 170, 48-56.,
Fiechter R, Deplazes p, Schnyder M, et al (2012): kontroll av Giardia infektioner med Ronidazol och intensiv hygienhantering i en hund Kennel. Vet Parasitol 187, 93-98.
Gil H, Cano L, de Lucio En, Bailo B, de Mingo MH, Cardona GA, Fernández-Basterra JA, Aramburu-Aguirre J, López-Molina N, Carmena D (2017): Upptäckt och molekylär mångfald av Giardia duodenalis och Cryptosporidium spp. i skyddade hundar och katter i norra Spanien. Infektera Genet Evol 50, 62-69.,
Hinney B, Ederer C, Stengl C, barry wilding K, Štrkolcová G, Harl J, Flechl E, Fuehrer HP, Joachim En (2015): Entero protozoer av katter och deras zoonotiska potential – en fältstudie från Österrike. Parasitol Res 114, 2003-2006.
Keith CL, Radecki SV, Lappin HERR (2003): Utvärdering av fenbendazol för behandling av Giardia-infektion hos katter samtidigt infekterade med Cryptosporidium parvum. Am J Vet Res 64, 1027-1029.,
Kostopoulou D, Claerebout E, Arvanitis D, Ligda P, Voutzourakis N, Casaert S, Sotiraki S (2017): Förekomst, zoonotiska potential och risk faktorer av intestinala parasiter hos hund och katt populationer: scenariot på Kreta, Grekland. Parasitvektorer 10, 43.
Lebbad M, Mattson JG, Christensson B, Ljungstrom B, Backhans A, Andersson JO, Svärd SG (2010): Från mus till älg: multilocus detektion av Giardia isolat från olika djur arter. Vet Parasitol 168, 231-239.,
McDowall RM, Pilgrimsfalk SOM Leonard EK, Lacombe C, Sjö M, Rebelo AR, et al (2011): Utvärdering av zoonotiska potential av Giardia duodenalis i fekala prover från hundar och katter i Ontario. Kan Veterinär J 12, 1329-1333.
McGlade TR, Robertson ID, Elliot AD, Thompson RC (2003): hög prevalens av Giardia detekteras hos katter av PCR. Vet Parasitol 110, 197-205.
Olson ME, Leonard nj, Srout J (2010): prevalens och diagnos av Giardia-infektion hos hundar och katter som använder ett fekal antigentest och fekal smet. Kan Veterinären J 51, 640-642.,
Pallant L, Barutzki D, Schaper R, Thompson RC (2015):.Epidemiologi av infektioner med Giardia arter och genotyper i väl omhändertagna för hundar och katter i Tyskland. Parasitvektorer 8, 2.
Paoletti B, Otranto D, Weigel S, Giangaspero En, Di Cesare En, Traversa D (2010): Förekomst och genetisk karakterisering av Giardia och Cryptosporidium hos katter från Italien. Res Vet Sci 91, 397-399.
Piekarska J, Bajzert J, Gorczykowski M, Kantyka M, Podkowik M (2016): Molekylär identifiering av Giardia duodenalis isolat från inhemska hundar och katter i Wroclaw, Polen., Ann Agric Environ Med 23, 410-415.
Pipiková J, Papajová jag, Majláthová V, Šoltys J, Bystrianska J, Schusterová jag, Vargová V (2018): den Första rapporten om Giardia duodenalis samling F i Slovakiska barn som lever i fattiga förhållanden. J Microbiol Immunol Infektera 53, 148-156.
Sommer MF, Rupp P, Pietsch M, Kaspar En, Beelitz P (2018): Giardia i en utvald population av hundar och katter i Tyskland – diagnostik, coinfections och assemblage. Vet Parasitol 249, 49-56.,
Sotiriadou jag, Pantchev N, Gassmann D, Karanis P (2013): Molekylär kartläggning av Giardia och Cryptosporidium från hundar och katter. Parasit 20, 8.
Thompson RC, Monis S (2012): Giardia – från genomet till proteom. Adv Parasit 78, 57-95.
Tysnes KR, Luyckx K, Cantas L, Robertson LJ (2016): Behandling av katt giardiasis under ett utbrott av diarré i ett katteri: potentiella effekter på fekala kolibakterier resistensläget. J Katt Med Surg 18, 679-682.,
Xiao L, Fayer R (2008): Molekylär karakterisering av arter och genotyper av Cryptosporidium och Giardia och bedömning av zoonotisk överföring. Int J Parasitol 38, 1239-1255.
Yang R, Ying JL, Monis P, Ryan U (2015): Molekylär karakterisering av Cryptosporidium och Giardia i katten (Felis catus) i Västra Australien. Exp Parasitol 155, 13-18.
Zanzani SA, Gazzonis AL, Scarpa P, Berrilli F, Manfredi MT (2014): tarmparasiter av ägda hundar och katter från storstads-och mikropolitiska områden: prevalens, zoonotiska risker och medvetenhet om husdjursägare i norra Italien., Biomed Res Int.: 2014: 696-508.