Giardioza/

editat iunie 2020

liniile directoare pentru giardioza la pisici au fost publicate de Tim Gruffydd-Jones și colab. în Jurnalul de Medicină și Chirurgie felină 2013, 15, 650-652. Această actualizare a fost compilată de Corine Boucraut-Baralon.Giardia este un parazit protozoar care infectează intestinul subțire al pisicilor și poate provoca diaree. Biotipurile considerate biotipuri specifice felinelor nu par să infecteze oamenii, dar biotipurile zoonotice (izolate din cazuri umane) se găsesc frecvent la pisici., Infecția este cea mai frecventă la pisicile tinere, în special din medii cu mai multe pisici. Pisicile infectate care dezvoltă semne clinice prezintă diaree la nivelul intestinului subțire și poate fi asociată scăderea în greutate. Diagnosticul infecției se bazează, de obicei, pe o ELISA în practică pentru flotația antigenului fecal sau a sulfatului de zinc a mai multor probe fecale cumulate. Testele PCR sunt disponibile, dar nu sunt utilizate pe scară largă. Infecția poate fi detectată la pisicile clinic sănătoase; prin urmare, interpretarea rezultatelor pozitive la pisicile cu diaree necesită îngrijire. Fenbendazolul sau metronidazolul sunt tratamentele la alegere., Deoarece modificările intestinale secundare pot necesita timp pentru a se rezolva, diareea poate continua chiar și după eliminarea infecției.

Agent

mai Multe nume au fost folosite pentru coccidian flagela protozoar parazit giardia – G. duodenalis (de asemenea, cunoscut sub numele de G. lamblia sau G. intestinalis). Giardia poate infecta un număr de gazde, inclusiv omul. Au fost identificate opt subtipuri moleculare diferite, desemnate A-H (Tabelul 1). F este subgrupul observat la pisici, în timp ce A și B sunt principalele subgrupuri la om (Lebbad et al., 2010)., Prin urmare, aceasta nu a fost considerată a fi o infecție zoonotică (Xiao and Fayer, 2008; Ballweber et al., 2010), deși numeroase studii recente au arătat că subtipurile A și B pot fi izolate de câini și pisici, uneori mai frecvent decât subtipul F care este considerat a fi specific felinelor.Tabelul 1. Asamblaje genetice (subtipuri) ale Giardia duodenalis infectând diferite specii (nomenclatura revizuită de Thompson și Monis, 2012)

ciclul de viață

parazitul are un ciclu de viață direct., Trăiește în intestinul subțire inferior al pisicii în forma sa trofozoită, aderentă la peretele intestinal. Se reproduce prin fisiune binară pentru a produce forma encysted, care este trecut în fecale, în plus față de trophozoites.

Epidemiologie

Giardia este transmisă pe cale fecal-orală. Deși trofozoiții sunt excretați în fecale, aceștia nu supraviețuiesc mult timp în mediu și este puțin probabil să provoace infecții., În schimb, chisturile sunt extrem de infecțioase, iar transmiterea cu succes necesită doar un număr mic pentru a fi ingerat. Chisturile pot supraviețui în mediu timp de până la câteva luni în condiții ideale și astfel poate apărea o transmisie indirectă prin contaminare fecală.studiile epidemiologice efectuate în diferite țări și eșantionarea diferitelor populații de pisici au arătat o prevalență variabilă. Acesta a variat în funcție de testul de screening diagnostic utilizat, dar, în general, prevalența a variat între 1-20% (Paoletti et al., 2010; Dado și colab., 2012; Sotiriadou și colab., 2013; Hinney și colab.,, 2015; Pallant și colab., 2015; Piekarska și colab., 2016; Gil și colab., 2017; Kostopoulou și colab., 2017). În studiile spaniole recente, prevalența infecției la pisici este scăzută în comparație cu câinii (de Lucio et al., 2017; Gil și colab., 2017). Într-un studiu recent din Germania, prevalența la câini și pisici care utilizează un test ELISA care detectează coproantigen a arătat o prevalență mai mare de 30 și, respectiv, 17% la câini și pisici (Sommer et al., 2018)

într-un studiu de meta-analiză, s-a demonstrat că prevalența a fost mai mare la pisicile cu diaree comparativ cu pisicile sănătoase (Bouzid et al., 2015)., Prevalența a fost, de asemenea, mai mare la pisicile tinere (Bouzid et al., 2015; Pallant și colab., 2015; Kostopoulou și colab., 2017) în multe studii și la pisici de rasă pură într-un studiu German (Pallant et al., 2015). Prevalența în adăposturi pare să fie mai mare decât la pisicile deținute (Hinney et al., 2015; de Lucio și colab., 2017; Gil și colab., 2017).parazitul poate provoca deteriorarea și pierderea celulelor epiteliale ale intestinului subțire inferior, provocând un răspuns inflamator. Este posibil să se estompeze vilozitățile intestinale care duc la malabsorbție.,

semnele clinice

pisicile tinere sunt mai sensibile atât la infecții, cât și la bolile asociate, majoritatea infecțiilor clinice apărând la pisicile cu vârsta sub un an. Multe cazuri de infecție cu Giardia nu sunt asociate cu boala evidentă, iar importanța acestui parazit ca agent patogen diareic la pisici nu este clară. Infecțiile experimentale au indus semne clinice, dar nu în toate cazurile. Mecanismul prin care este indusă diareea este neclar, dar se consideră că are legătură cu malabsorbția. Acest lucru poate fi însoțit de pierderea în greutate, care este o caracteristică proeminentă în unele cazuri., Diareea este de obicei de natură intestinală mică, cu trecerea fecalelor lichide sau semilichide, dar uneori diareea este intestinală mare, conținând mucus/sânge. Cursul clinic al bolii poate dura săptămâni întregi.răspunsul imun la infecția cu Giardia este puțin înțeles la pisici. Pe baza informațiilor provenite de la infecții la alte specii, se presupune că imunitatea celulară și răspunsul IgA sunt esențiale pentru asigurarea imunității protectoare.,infecția este diagnosticată folosind examinarea directă a frotiurilor fecale (examinarea monturii umede), metode de flotație fecală, teste de antigen Elisa fecal, imunofluorescență directă pe frotiuri fecale și PCR.Trofozoitele pot fi identificate în frotiuri fecale proaspete. Ele sunt motile cu o acțiune de rulare. O cantitate mică de fecale sau mucus proaspăt trecute este amestecată cu o picătură de soluție salină pe o lamelă de microscop, acoperită cu o lamelă și examinată imediat sub microscop la o mărire de x100. Examinarea suplimentară la x400 permite identificarea definitivă., De asemenea, este posibil să se utilizeze examinarea microscopică a aspiratelor duodenale colectate în timpul intubării endoscopice a intestinului subțire pentru trofozoiți. Cu toate acestea, Giardia tind să locuiască mai departe în intestinul subțire al pisicilor, dincolo de intubarea endoscopică (McDowall et al., 2011).

o metodă de flotație cu sulfat de zinc este recomandată pentru screeningul fecal. Excreția chisturilor este neregulată și, prin urmare, trebuie examinate mai multe (de obicei trei) probe fecale (colectate în zile consecutive sau alternative)., Metodele de sare saturate de rutină sau zaharoză sunt nesatisfăcătoare, deoarece duc la denaturarea chisturilor.de asemenea, este posibil să se utilizeze o tehnică directă de anticorpi fluorescenți pentru a detecta chisturile în frotiurile fecale, deși acest test nu este utilizat pe scară largă în Europa.sunt disponibile tehnici ELISA pentru detectarea antigenului în materiile fecale, inclusiv un test SNAP în practică (IDEXX Ltd.), dar aceste metode nu par a fi mai sensibile decât screeningul fecal atent (Barr et al., 1992)., Studiile au arătat că detectarea Elisa a antigenului se corelează bine cu rezultatele directe ale screeningului anticorpilor fluorescenți (Cirak și Bauer, 2004).testele PCR sunt disponibile, dar nu sunt utilizate pe scară largă. Ei au avantajul de a putea identifica subtipul prezent. Primele studii bazate pe PCR au evidențiat o proporție ridicată de rezultate pozitive (până la 80%), ceea ce a ridicat îngrijorarea că testele PCR ar putea detecta infecții care nu sunt relevante din punct de vedere clinic (McGlade et al., 2003)., Cu toate acestea, testele cantitative PCR în timp real sunt acum disponibile pentru detectarea Giardia și studii recente au dat rate de prevalență similare cu alte tehnici (Yang et al., 2015).metoda de flotație fecală a fost testul standard folosit în trecut, dar testul antigenului fecal în practică pare a fi la fel de sensibil și specific și este convenabil de efectuat. Examinarea frotiurilor fecale este ieftină și are avantajul de a identifica alți paraziți potențiali – dar nu este populară în practică și este mai puțin sensibilă (Olson et al., 2010).,o abordare pragmatică adesea folosită de practicieni ca alternativă la testare este evaluarea răspunsului la tratament. Cu toate acestea, această abordare trebuie evitată din cauza riscului de modificare a florei intestinale cu antibiotice. În plus, infecțiile concomitente cu alți paraziți, cum ar fi Tritrichomonas fetus sau Cryptosporidium, sunt frecvente și tratamentul, dacă este necesar, trebuie adaptat la rezultatele analizelor.,datorită potențialului de apariție a rezistenței anti-bacteriene și paraziticide, nu se recomandă tratarea pisicilor asimptomatice cu Giardia pozitivă, în special cu metronidazol sau fenbendazol.tratamentul standard pentru infecția cu Giardia a fost, în general, un imidazol, de obicei fenbendazol (Panacur) administrat la 50 mg/kg timp de 5-7 zile (Barr et al., 1994; Keith și colab., 2003). Fenbendazolul poate fi utilizat la femeile gravide., Metronidazolul este o alternativă, iar recomandarea inițială a fost utilizarea acestuia la o doză de 50 mg/kg timp de cinci zile, dar acest medicament nu trebuie utilizat la reginele gravide. Această doză prezintă un risc crescut de efecte secundare – toxicitate nervoasă centrală care provoacă slăbiciune, ataxie, dezorientare și convulsii. Recent, sa sugerat că o doză zilnică de 25 mg/kg este eficientă și este puțin probabil să inducă efecte secundare., În unele cazuri dificile care implică multe pisici infectate, ar putea fi necesar un al doilea tratament și, în această situație, o combinație de fenbendazol și metronidazol ar putea fi eficientă. Cu toate acestea, s-a sugerat că un tratament de runda a doua cu fenbendazol ar putea potența apariția rezistenței la antibiotice A E. coli (Tysnes et al., 2016).o alternativă este utilizarea Ronidazolului care s-a dovedit a fi eficient împotriva giardiei la câini (Fiechter et al., 2012) și pisici (Zanzani et al., 2016). Ronidazolul este, de asemenea, utilizat în prezent pentru a trata infecția fetală cu Trichomonas la pisici.,nu se recomandă tratarea pisicilor asimptomatice, dar în mediile cu mai multe pisici, unde pisicile prezintă semne clinice, ar putea fi mai eficient să se trateze toate animalele (câini și pisici) care trăiesc împreună (recomandarea ESCCAP). În plus, trebuie tratate pisicile pozitive care trăiesc în contact cu persoanele imunocompromise.pe lângă tratarea pisicilor infectate, este esențial să se gestioneze mediul înconjurător pentru a preveni suprainfecția și reinfecția după tratament.,prevenirea și igiena în medii contaminate, curățarea intensivă și utilizarea compușilor 4-clor-m-crezol (Clorocrezol) sau a compușilor cuaternari de amoniu sunt eficiente pentru a preveni reinfectarea și răspândirea infecției în casele cu mai multe pisici. Fecalele de la animalele infectate trebuie distruse, iar bolurile și suprafețele trebuie curățate și dezinfectate cu compuși cuaternari de amoniu. Dacă este posibil, mutarea pisicii într-o altă cameră poate ajuta, de asemenea, la evitarea re-infectării.,spălarea / șamponarea animalelor sau cel puțin zona perianală cu șampon care conține clorhexidină la începutul și sfârșitul tratamentului poate ajuta la eliminarea chisturilor.testarea ar putea fi propusă pentru pisicile noi care intră într-un mediu cu mai multe pisici, pentru a evita introducerea parazitului. Acest lucru se poate face în perioada de carantină.personalul de îngrijire (asistente medicale, medici veterinari, studenți veterinari) trebuie să fie conștient și trebuie să respecte regulile de igienă.un vaccin pe bază de trofozoiți inactivați a fost utilizat în SUA, dar nu și în Europa; nu mai este disponibil., A fost utilizat atât pentru tratament, cât și pentru prevenire.multe studii europene efectuate în Germania, Italia, Spania, Grecia și Polonia au demonstrat prezența subgrupului A la pisici (Paoletti et al., 2010; Dado și colab., 2012; Sotiriadou și colab., 2013; Zanzani și colab., 2014; Pallant și colab., 2015; Piekarska și colab., 2016; Kostopoulou și colab., 2017; Gil și colab., 2017), fie singur, fie ca o infecție dublă (A și F; Dado și colab., 2012). Genotipul B a fost, de asemenea, identificat la pisici (Pallant et al., 2015; Kostopoulou și colab.,, 2017), dar A este cea mai răspândită, conform diferitelor studii europene și una Canadiană (McDowall et al., 2011). Riscul de a adăposti Giardia zoonotică pare să fie mai mare la pisicile tinere <1 an comparativ cu pisicile mai în vârstă.un studiu recent nu a reușit să detecteze asamblările zoonotice la 3 câini pozitivi Giardia și 2 pisici pozitive care trăiesc în regiunea Alava din Spania, sugerând că transmiterea în gospodărie a Giardia de către animalele de companie, dacă apare, este rară. În acest studiu nu există infecții simultane la gazdele umane și canine / feline de G., duodenalis au fost demonstrate deși 29% (16/55) din câini și 5,9% din pisici au fost pozitive (de Lucio et al., 2017), iar prezența asamblării zoonotice A a fost detectată la pisicile dintr-un adăpost din aceeași regiune (Gil et al., 2017).pe de altă parte, un studiu realizat la copii din condiții precare de mediu din Slovacia a arătat că asamblarea specifică a pisicii F este prezentă la om în Europa (Pipikova et al., 2018).,până în prezent, nu există niciun studiu care să demonstreze transmiterea directă a giardiei de la pisici la oameni, iar principalele surse de contaminare pentru oameni par a fi legumele crude și apa. În plus, prevalența infecției cu Giardia la pisicile asimptomatice este scăzută în majoritatea țărilor europene.cu toate acestea, deși nu există dovezi ale transmiterii directe a Giardia de la pisici la oameni și având în vedere că speciile zoonotice sunt uneori detectate la pisicile infectate (tinere), potențialul zoonotic al Giardia la pisici trebuie luat în considerare atunci când pisicile tinere trăiesc cu persoane imunocompromise., Prin urmare, se recomandă testarea acestor pisici.ABCD Europe recunoaște cu recunoștință sprijinul lui Boehringer Ingelheim (sponsorul fondator al ABCD) și Virbac.Ballweber LR, Xiao L, Bowman DD, Kahn G, Cama VA (2010): giardioza la câini și pisici: actualizare privind epidemiologia și semnificația sănătății publice. Tendințe Parazitol 26, 180-189.Barr SC, Bowman DD, Erb HN( 1992): evaluarea a două proceduri de testare pentru diagnosticarea giardiei la câini. Am J Vet Res 53, 2028.,Barr SC, Bowman DD, Heller RL( 1994): eficacitatea fenbendazolului împotriva giardiei la câini. Am J Vet Res 55, 988-990.Bouzid M, Halai K, Jeffreys D, Hunter PR (2015): prevalența infecției cu Giardia la câini și pisici, o revizuire sistematică și meta-analiză a studiilor de prevalență din probele de scaun. Vet Parazitol 207, 181-202.

Cirak VY, Bauer C (2004): Compararea convenționale coproscopical metode și comerciale coproantigen truse ELISA pentru detectarea de Giardia și Cryptosporidium infecții la câini și pisici. Berl Munch Tierarztl Wochenschr 117, 410-413.,

Dado D, Montoya A, Blanco MA, Miró G, Saugar JM, bail-ul B, et al (2012): Prevalența genotipurilor și de Giardia duodenalis la câinii din Spania: posibil transmitere zoonotică și importanță pentru sănătatea publică. Parazitol Res 111, 2419-2422.

de Lucio O, bail-ul B, Aguilera M, Cardona GA, Fernández-Crespo JC, Carmena D (2017): Nu moleculară dovezile epidemiologice sprijinirea uz casnic transmiterea zoonotică Giardia duodenalis și Cryptosporidium spp. de la câini și pisici de companie din provincia Álava, nordul Spaniei. Acta Trop 170, 48-56.,

Fiechter R, Deplazes P, Schnyder M, et al (2012): Control de Giardia Infecții Cu Ronidazole și Intensiv de Management al Igienei într-o Cușcă de Câine. Vet Parazitol 187, 93-98.

Gil H, Cano L, de Lucio O, bail-ul B, de Mingo MH, Cardona GA, Fernández-Basterra JA, Aramburu-Aguirre J, López-Molina N, Carmena D (2017): Detectarea și diversitatea moleculară de Giardia duodenalis și Cryptosporidium spp. la câini și pisici adăpostite în nordul Spaniei. Infectează Genet Evol 50, 62-69.,

Hinney B, Ederer C, Stengl C, Wilding K, Štrkolcová G, Harl J, Flechl E, Fuhrer-ul HP, Joachim O (2015): Enteric protozoare de pisici și lor potențial zoonotic – un studiu de teren din Austria. Parazitol Res 114, 2003-2006.Keith CL, Radecki SV, Lappin MR( 2003): evaluarea fenbendazolului pentru tratamentul infecției cu Giardia la pisicile infectate concomitent cu Cryptosporidium parvum. Am J Vet Res 64, 1027-1029.,

Kostopoulou D, Claerebout E, Arvanitis D, Ligda P, Voutzourakis N, Casaert S, Sotiraki S (2017): Abundenta, potențial zoonotic și factori de risc de parazitismului intestinal printre câini și pisici populații: scenariul de Creta, Grecia. Parazit Vectori 10, 43.

Lebbad M, Mattson JG, Christensson B, Ljungstrom B, Backhans O, Andersson JO, Svard SG (2010): De la mouse-ul cu elan: multilocus genotipare de Giardia izolate de la diverse specii de animale. Vet Parazitol 168, 231-239.,McDowall RM, Peregrine AS, Leonard EK, Lacombe C, Lacul M, Rebelo AR, et al (2011): evaluarea potențialului zoonotic al Giardia duodenalis în probele fecale de la câini și pisici din Ontario. Poate Vet J 12, 1329-1333.McGlade TR, Robertson ID, Elliot AD, Thompson RC( 2003): prevalența ridicată a Giardia detectată la pisici prin PCR. Vet Parazitol 110, 197-205.Olson ME, Leonard NJ, Srout J (2010): prevalența și diagnosticul infecției cu Giardia la câini și pisici folosind un test de antigen fecal și frotiu fecal. Poate Vet J 51, 640-642.,

Pallant L, Barutzki D, Schaper R, Thompson RC (2015):.Epidemiologia infecțiilor cu specii și genotipuri Giardia la câini și pisici bine îngrijite în Germania. Parazit Vectori 8, 2.Paoletti B, Otranto D, Weigl S, Giangaspero A, Di Cesare A, Traversa D( 2010): prevalența și caracterizarea genetică a Giardia și Cryptosporidium la pisicile din Italia. Res Vet Sci 91, 397-399.

Piekarska J, Bajzert J, Gorczykowski M, Kantyka M, Podkowik M (2016): identificarea Moleculară de Giardia duodenalis izolate de la câini și pisici domestice în Wroclaw, Polonia., Ann Agric Environ Med 23, 410-415.

Pipiková J, Papajová eu, Majláthová V, Šoltys J, Bystrianska J, Schusterová eu, Vargová V (2018): Primul raport privind Giardia duodenalis montaj F în Slovacă copiii care trăiesc în condiții precare de mediu. J Microbiol Immunol Infecta 53, 148-156.Sommer MF, Rupp P, Pietsch M, Kaspar a, Beelitz P (2018): Giardia într – o populație selectată de câini și pisici din Germania-diagnostice, coinfecții și asamblări. Vet Parazitol 249, 49-56.,Sotiriadou i, Pantchev N, Gassmann D, Karanis P (2013): identificarea moleculară a Giardia și Cryptosporidium de la câini și pisici. Parazit 20, 8.Thompson RC, Monis P( 2012): Giardia – de la genom la proteom. Adv Parazit 78, 57-95.

Tysnes KR, Luyckx K, Cantas L, Robertson LJ (2016): Tratamentul de feline giardioza timpul unei epidemii de diaree la o felisa: efectele potențiale asupra fecale Escherichia coli modele de rezistență. J Feline Med Surg 18, 679-682.,Xiao L, Fayer R( 2008): caracterizarea moleculară a speciilor și genotipurilor de Cryptosporidium și Giardia și evaluarea transmiterii zoonotice. Int J Parazitol 38, 1239-1255.Yang R, Ying JL, Monis P, Ryan U (2015): caracterizarea moleculară a Cryptosporidium și Giardia la pisici (Felis catus) în Australia de Vest. Exp Parazitol 155, 13-18.

Zanzani SA, Gazzonis AL, Scarpa P, Berrilli F, Manfredi MT (2014): paraziti Intestinali deținute de câini și pisici de la metropolitan și micropolitan domenii: prevalența, zoonotici riscuri, și proprietar de animale de companie de conștientizare în nordul Italiei., Biomed Res Int.: 2014: 696-508.