Bacillus Coagulans wzmacnia funkcję immunologiczną błony śluzowej jelit żółtych brojlerów

Anderson RC, Cookson AL, McNabb WC, Park z, Mccann MJ. Lactobacillus plantarum MB452 wzmacnia funkcję bariery jelitowej poprzez zwiększenie poziomu ekspresji genów zaangażowanych w tworzenie ciasnych połączeń. BMC 2010; 10: 316.

Apajalahti J, Kettunen A, Graham H. World Drób Science Journal 2004; 60 (2): 223-232.,

Jindal a, Kocherginskaya S, Mehboob A, Robert M,Mackie RI,Zillles LR. Zastosowanie i oporność na środki przeciwdrobnoustrojowe w systemach przetwarzania odpadów trzody chlewnej. Mikrobiologia stosowana i środowiskowa 2006; 72 (12): 7813-7820.

Artis D. Rozpoznawanie komórek nabłonkowych bakterii komensalnych i utrzymanie homeostazy immunologicznej w jelitach. Nature Reviews Immunology 2008; 8 (6): 411-420.

Caspary WF. Fizjologia i patofizjologia wchłaniania jelitowego. American Journal of Clinical Nutrition 1992; (55): 299-308.

Castillo na, Perdigón G, Leblanc A de M., Doustne Podanie probiotycznego Lactobacillus moduluje produkcję cytokin i ekspresję TLR, poprawiając odpowiedź immunologiczną przeciwko zakażeniu Salmonella enterica serovar typhimurium u myszy. BMC Microbiology 2011; 11: 177-189.

Cui YL, Run SC, WAN FC. Bakteriostaza Bacillus coagulans TBC 169 do bakterii enteropatogennych. Chinese Journal of Microecology 2005; 17 (5): 333-338.

probiotyki Dai C, Zhao D H, Jiang M. vsl3 regulują barierę nabłonka jelitowego in vivo i in vitro za pośrednictwem szlaków sygnałowych p38 i ERK., International Journal of Molecular Medicine 2012; 29 (2): 202-208.

Duerr CU, Hornef MW. Nabłonek jelitowy ssaków jako integralny podmiot w tworzeniu i utrzymaniu homeostazy gospodarza-drobnoustrojów. Seminaria Immunologia 2012; 24 (1): 25-35.

Furrie E, Macfarlane S, Kennedy A, Cummings JH, Walsh SV, O ' Neil DA. Terapia synbiotyczna (Bifidobacterium longum / Synergy 1) inicjuje ustąpienie stanu zapalnego u pacjentów z czynnym wrzodziejącym zapaleniem jelita grubego: randomizowane kontrolowane badanie pilotażowe. Gut 2005; 54(2): 242-249.

Gómez-Llorente C, Muñoz S, Gil A., Rola receptorów Toll-like w rozwoju immunotolerancji za pośrednictwem probiotyków. Postępowanie Towarzystwa żywieniowego 2010; 69 (3): 381-389.

Giang HH, Viet T Q, Linberg J E, Linberg JE. Wydajność, strawność, środowisko jelitowe i stan zdrowia u prosiąt odsadzonych od maciory karmionych dietą uzupełnioną potencjalnie probiotycznymi kompleksami bakterii kwasu mlekowego. Hodowla Zwierząt 2010;129 (1-3): 95-103.

Honda H, Gibson GR, Farmer S, Keller D, McCartney al., Zastosowanie systemu ciągłej fermentacji hodowlanej w celu zbadania wpływu suplementacji GanedenBC30 (Bacillus coagulans GBI – 30, 6086) na przeżywalność patogenu w ludzkiej mikrobiocie jelitowej. Anaerobe 2011; 17 (1): 36-42.

Kailova L, Mount Patrick SK, Arganbright KM, Halpem MD, Kinouchi T,Dvorak B. Bifidobacterium bifidum zmniejsza apoptozę w nabłonku jelitowym w martwiczym zapaleniu jelit. American Journal of Physiology Gastrointestinal Liver Physiology 2010; 299(5):1118-1127.

Kawai T, Akira S., Rola receptorów rozpoznawania wzorców w odporności wrodzonej: aktualizacja receptorów Toll-like. Nature Immunology 2010; 11: 373-384.

Kodali VP, Sen R. działanie przeciwutleniające i oczyszczające wolne rodniki egzopolisacharydu z bakterii probiotycznych. Journal of Biotechnology 2008; 3(2): 245-251.

Sahoo KC, Tamhankar AJ, Johansson E, Lundborg CS. Stosowanie antybiotyków, rozwój oporności i czynniki środowiskowe: badanie jakościowe wśród pracowników służby zdrowia w Orissa, Indie. BMC Public Health 2010; 10 (1): 1-10.

Lebeer S, Vanderleyden J, De Keersmaecker CJ., Interakcje gospodarza z probiotycznymi cząsteczkami powierzchniowymi bakterii: porównanie z komensalami i patogenami. Przegląd Przyrodniczy Mikrobiologia 2010; 8 (3): 171-184.

Lei XJ, Piao X , Ru Y, Zhang H, Peron A, Zhang H. wpływ mikroorganizmów bezpośrednio karmionych bacillus amyloliquefaciens na wydajność, wykorzystanie składników odżywczych, morfologię jelit i mikroflorę kakaową u kurcząt brojlerów. Asian-Australasian Journal of Animal Science 2015; 28(2):239-246.

Lin LH, Ke FR, Zhan TT, Xu LH, Wang QX, Wang CK, Huang SW., Wpływ Bacillus coagulans na wydajność, wskaźniki biochemiczne surowicy i funkcję przeciwutleniającą brojlerów żółtych. Chinese Journal of Animal Nutrition. 2014, 26(12): 2806-2813.

Szczepy Lactobacillus reuteri zmniejszają częstość występowania i nasilenie doświadczalnego martwiczego zapalenia jelit poprzez modulację TLR4 i NF – (B sygnalizacji w jelicie. American Journal of Physiology Gastrointestinal Liver Physiology 2012; 302 (6): 608-617.

Ma K, Maeda T, You H, Shirai Y., Otwarta fermentacyjna produkcja kwasu L-mlekowego o wysokiej czystości optycznej przez termofilne Bacillus coagulans z wykorzystaniem nadmiaru osadu jako substancji odżywczej. Technologia Bioresource 2014;151: 28-35.

Moore PR, Evension A, Luckey TD, Mccoy E, Elvehjem CA, Hart EB. Stosowanie sulfasuksydyny, streptotycyny i streptomycyny w badaniach żywieniowych z kurczakiem.The Journal of Biological Chemistry 1946;165: 437-441.

Natsir MH, Sjofjan O, Umam K, Manab A, Widodo E. wpływ kwasu mlekowego w płynie i kapsułkach w diecie brojlerów na właściwości jelit i mikroflorę jelitową.,[2010-07-24 14: 24]

Pan X, Qiang z, Ben w, Chen M. pozostałości antybiotyków weterynaryjnych w oborniku świń z operacji skoncentrowanego żywienia zwierząt w prowincji Shandong w Chinach. Chemosphere 2011; 84 (5): 695-700.

Rajput IR, Li LY, Xin X, Wu BB, Juan ZL, Cui DY, Li WF. Wpływ Saccharomyces boulardii i Bacillus subtills B10 na modulację ultrastruktury jelit i mechanizm rozwoju odporności śluzowej u kurcząt brojlerów. Nauka O Drobiu 2013; 92 (4): 956-965.

Rajput IR, Hussain A, Li YL, Zhang X, Xu X, Long MY, You DY, Li WF., Saccharomyces boulardii i Bacillus subtilis B10 modulują sygnalizację za pośrednictwem TLRs w celu indukowania odporności przez Bmdc kurcząt. Journal of Cell Biochemistry 2014; 115 (1): 189-198.

Riazi S, Wirawan RE, Badmaev V, Chikindas ML. Charakterystyka laktosporyny, nowego białka przeciwbakteryjnego wytwarzanego przez Bacillus coagulans ATCC 7050. Journal of Applied Microbiology 2009; 106 (4): 1370-1377.

Ripamonti B, Agazzi A, Baldi a, Balzaretti C, Bersani C, Pirani S, Rebucci R, Savoini G, Stilla S, Stenico A, Domeneghini C., Podawanie Bacillus coagulans u cieląt: odzysk z próbek kału i ocena funkcjonalnych aspektów zarodników. Veterninary Research Communication 2009; 33 (8): 991-1001.

Smither R, Lott Af, Dalziel RW, Ostler DC. Pozostałości antybiotyków w mięsie w Zjednoczonym Królestwie; ocena specyficznych testów wykrywających i identyfikujących pozostałości antybiotyków. Journal of Hygiene, Camb 1980; 85(3):359- 359.

Vahjen W, Osswald T, Schäfer K, Simon O., Porównanie ksylanazy i kompleksu enzymów rozkładających polisacharydy nieskrobiowe pod względem wydajności i metabolizmu bakterii u prosiąt odsadzonych od maciory. Archiwum Żywienia Zwierząt 2007; 61 (2): 90-102.

Wang N, Wang G, Hao JX, Ma JJ, Wang Y, Jiang XY, Jiang HQ.Kurkumina zmniejsza barierę nabłonkową wywołaną nadtlenkiem wodoru poprzez zwiększenie ekspresji oksygenazy hemu-1 w ludzkich komórkach nabłonka jelitowego.Choroby układu pokarmowego i nauka 2012; 57 (7): 1792-1801.

Wells JM. Mechanizmy immunomodulujące laktabacilli. Microbial Cell Factories 2011; 10 (suppl 1): S17.,

Wells JM, Rossi O, Meijerink M, Baarlen P. [2011-10-08 16: 46]

Zhang L, Xu Y Q, Liu H Y, Lai T,Ma JJ, Wang JF,Zhu YH.Ocena bakterii Lactobacillus rhamnosus GG z wykorzystaniem modelu Escherichia coli K88 biegunki prosiąt: wpływ na częstość występowania biegunki, mikroflorę kału i odpowiedzi immunologiczne. Vet Microbiol 2010; 141 (1-2): 141-148.

Leave a Comment