Giardiasis/

bewerkt in juni 2020

de richtlijnen voor Giardiasis bij katten zijn gepubliceerd door Tim Gruffydd-Jones et al. In The Journal of Feline Medicine and Surgery 2013, 15, 650-652. Deze update is samengesteld door Corine Boucraut-Baralon.

Synopsis

Giardia is een protozoale parasiet die de dunne darm van katten infecteert en diarree kan veroorzaken. De biotypen die als felienspecifieke biotypen worden beschouwd, lijken geen mensen te infecteren, maar zoönotische biotypen (geïsoleerd uit menselijke gevallen) worden vaak bij katten aangetroffen., Infectie komt het meest voor bij jonge katten, met name van multi-cat achtergronden. Geïnfecteerde katten die klinische symptomen ontwikkelen, vertonen dunne darmdiarree en er kan een geassocieerd gewichtsverlies optreden. De diagnose van infectie is meestal gebaseerd op een in-praktijk ELISA voor fecaal antigeen of zinksulfaat flotatie van verschillende gepoolde fecale monsters. PCR-tests zijn beschikbaar, maar niet op grote schaal gebruikt. Infectie kan worden gedetecteerd bij klinisch gezonde katten; daarom is voorzichtigheid geboden bij het interpreteren van positieve resultaten bij katten met diarree. Fenbendazol of metronidazol zijn de behandelingen van keuze., Omdat secundaire darmveranderingen tijd kunnen vergen om te verdwijnen, kan de diarree doorgaan, zelfs nadat de infectie is geëlimineerd.

agens

verschillende namen zijn gebruikt voor de coccidiaanse flagellaatprotozoaire parasiet giardia – G. duodenalis (ook bekend als G. lamblia of G. intestinalis). Giardia kan een aantal gastheren infecteren, waaronder de mens. Er zijn acht verschillende moleculaire subtypes geïdentificeerd, aangeduid als A-H (Tabel 1). F is de subgroep die bij katten wordt gezien, terwijl A en B de belangrijkste subgroepen bij de mens zijn (Lebbad et al., 2010)., Dit werd daarom niet beschouwd als een zoönotische infectie (Xiao and Fayer, 2008; Ballweber et al., 2010), hoewel tal van recente studies hebben aangetoond dat A en B subtypes kunnen worden geïsoleerd van honden en katten, soms vaker dan het F subtype dat wordt beschouwd als katachtige-specifieke.

Tabel 1. Genetische assemblages (subtypes) van Giardia duodenalis infecting different species (revised nomenclature by Thompson and Monis, 2012)

levenscyclus

de parasiet heeft een directe levenscyclus., Het leeft in de onderste dunne darm van de kat in zijn trofozoietvorm, aanhangend aan de darmwand. Het repliceert door binaire splitsing om de ingekapselde vorm te produceren, die in de feces naast de trophozoites wordt overgegaan.

Epidemiologie

Giardia wordt overgedragen via de fecale-orale route. Hoewel trophozoieten in de feces worden uitgescheiden, overleven deze niet lang in de omgeving en veroorzaken ze waarschijnlijk geen infectie., In tegenstelling, cysten zijn zeer infectieus en succesvolle transmissie vereist slechts een klein aantal worden ingenomen. De cysten kunnen in de omgeving tot enkele maanden in ideale omstandigheden overleven en Zo kan indirecte overdracht via fecale contaminatie optreden.

epidemiologische studies in verschillende landen en bemonstering van verschillende kattenpopulaties hebben een variabele prevalentie aangetoond. De prevalentie varieerde naar gelang van de gebruikte diagnostische screeningtest, maar over het algemeen varieerde de prevalentie van 1-20% (Paoletti et al., 2010; Dado et al., 2012; Sotiriadou et al., 2013; Hinney et al.,, 2015; Pallant et al., 2015; Piekarska et al., 2016; Gil et al., 2017; Kostopoulou et al., 2017). In recente Spaanse studies is de prevalentie van infectie bij katten laag in vergelijking met honden (De Lucio et al., 2017; Gil et al., 2017). In een recente studie uit Duitsland toonde de prevalentie bij honden en katten met behulp van een ELISA-test die coproantigen detecteerde, een hogere prevalentie aan van respectievelijk 30 en 17% bij honden en katten (Sommer et al., 2018)

in een meta-analyse-studie werd aangetoond dat de prevalentie bij katten met diarree hoger was dan bij gezonde katten (Bouzid et al., 2015)., De prevalentie was ook hoger bij jonge katten (Bouzid et al., 2015; Pallant et al., 2015; Kostopoulou et al., 2017) in vele studies en in raszuivere katten in één Duitse studie (Pallant et al., 2015). De prevalentie in schuilplaatsen lijkt hoger te zijn dan bij katten in eigendom (Hinney et al., 2015; De Lucio et al., 2017; Gil et al., 2017).

pathogenese

de parasiet kan schade aan en verlies van de epitheliale cellen van de dunne darm veroorzaken en een ontstekingsreactie veroorzaken. Er kan worden afgestompt van de intestinale villi leidt tot malabsorptie.,

klinische symptomen

jonge katten zijn gevoeliger voor zowel infectie als geassocieerde ziekte, waarbij de meeste klinische infecties optreden bij katten jonger dan één jaar. Veel gevallen van Giardia-infectie worden niet geassocieerd met openlijke ziekte, en het belang van deze parasiet als een diarree pathogeen bij katten is niet duidelijk. Experimentele infecties hebben klinische symptomen veroorzaakt, maar niet in alle gevallen. Het mechanisme waardoor diarree wordt geïnduceerd is onduidelijk, maar men denkt dat het verband houdt met malabsorptie. Dit kan gepaard gaan met gewichtsverlies, dat is een prominente functie in sommige gevallen., De diarree is meestal van een dunne darm aard met passage van vloeibare of semi-vloeibare feces, maar soms is de diarree in de dikke darm, met slijm/bloed. Het klinische verloop van de ziekte kan weken duren.

immuniteit

de immuunrespons op Giardia-infectie is slecht begrepen bij katten. Op basis van informatie over infecties bij andere diersoorten wordt aangenomen dat cellulaire immuniteit en de IgA-respons de sleutel zijn tot beschermende immuniteit.,

diagnose

de infectie wordt gediagnosticeerd met behulp van direct onderzoek van fecale uitstrijkjes (nat mount onderzoek), fecale flotatiemethoden, fecale ELISA antigeentests, directe immunofluorescentie op fecale uitstrijkjes en PCR.

Trofozoieten kunnen worden geïdentificeerd aan de hand van verse fecale uitstrijkjes. Ze zijn beweeglijk met een rollende actie. Een kleine hoeveelheid pas doorgegeven feces of slijm wordt gemengd met een druppel zoutoplossing op een microscoopglaasje, bedekt met een coverslip en onmiddellijk onderzocht onder een microscoop met een vergroting van x100. Verder onderzoek bij x400 maakt definitieve identificatie mogelijk., Het is ook mogelijk om microscopisch onderzoek te gebruiken van duodenale aspiraten verzameld tijdens endoscopische dunne intubatie van trophozoieten. Giardia heeft echter de neiging om verder in de dunne darm van katten te verblijven, buiten het bereik van endoscopische intubatie (McDowall et al., 2011).

een zinksulfaat flotatiemethode wordt aanbevolen voor fecale screening. De excretie van cysten is onregelmatig en daarom moeten verschillende (meestal drie) fecale monsters (verzameld op opeenvolgende of om de andere dagen) worden gescreend., Routine verzadigde zout of sucrose methoden zijn onbevredigend, omdat ze leiden tot vervorming van de cysten.

Het is ook mogelijk om een directe fluorescerende antilichaamtechniek te gebruiken om cysten in fecale uitstrijkjes op te sporen, hoewel deze test in Europa niet op grote schaal wordt gebruikt.

ELISA-technieken voor het opsporen van antigeen in de feces zijn beschikbaar, waaronder een in-practice SNAP-test (IDEXX Ltd.), maar deze methoden lijken niet gevoeliger te zijn dan zorgvuldige fecale screening (Barr et al., 1992)., Studies hebben aangetoond dat de Elisa-detectie van antigeen goed correleert met de resultaten van de directe fluorescerende antilichaamscreening (Cirak and Bauer, 2004).

PCR-tests zijn beschikbaar, maar worden niet op grote schaal gebruikt. Ze hebben het voordeel dat ze het aanwezige subtype kunnen identificeren. De eerste op PCR gebaseerde studies toonden een hoog percentage positieven aan( tot 80%), wat bezorgdheid heeft gewekt dat PCR-tests infecties zouden kunnen detecteren die niet klinisch relevant zijn (McGlade et al., 2003)., Echter, kwantitatieve real-time PCR assays zijn nu beschikbaar voor Giardia detectie en recente studies gaven vergelijkbare prevalentiepercentages aan andere technieken (Yang et al., 2015).

de fecale flotatiemethode was in het verleden de standaardtest, maar de in de praktijk uitgevoerde fecale antigeentest blijkt even gevoelig en specifiek te zijn en is gemakkelijk uit te voeren. Onderzoek van fecale uitstrijkjes is goedkoop en heeft het voordeel van het identificeren van andere potentiële parasieten-maar het is niet populair in de praktijk en is minder gevoelig (Olson et al., 2010).,

een pragmatische aanpak die vaak wordt gebruikt door artsen als alternatief voor het testen is het beoordelen van de respons op de behandeling. Deze aanpak moet echter worden vermeden vanwege het risico dat de darmflora met antibiotica wordt gewijzigd. Bovendien komen co-infecties met andere parasieten zoals Tritrichomonas foetus of Cryptosporidium vaak voor en moet de behandeling, indien nodig, worden aangepast aan de resultaten van de analyses.,

behandeling

vanwege het mogelijke optreden van anti-bacteriële en parasitaire resistentie, wordt het niet aanbevolen om asymptomatische Giardia-positieve katten te behandelen, vooral met metronidazol of fenbendazol.

de standaardbehandeling voor Giardia-infectie was over het algemeen een imidazol, meestal fenbendazol (Panacur) toegediend in een dosis van 50 mg / kg gedurende 5-7 dagen (Barr et al., 1994; Keith et al., 2003). Fenbendazol kan worden gebruikt bij drachtige poezen., Metronidazol is een alternatief en de oorspronkelijke aanbeveling was om het te gebruiken in een dosering van 50 mg/kg gedurende vijf dagen, maar dit medicijn mag niet worden gebruikt bij zwangere vrouwen. Deze dosering brengt een verhoogd risico op bijwerkingen met zich mee – toxiciteit van het centrale zenuwstelsel die zwakte, ataxie, desoriëntatie en epileptische aanvallen veroorzaakt. Onlangs is gesuggereerd dat een dagelijkse dosering van 25 mg/kg effectief is en waarschijnlijk geen bijwerkingen zal veroorzaken., In sommige moeilijke gevallen waarbij veel geïnfecteerde katten betrokken zijn, kan een tweede behandeling noodzakelijk zijn en in die situatie kan een combinatie van fenbendazol en metronidazol effectief zijn. Er is echter gesuggereerd dat een tweede-ronde behandeling met fenbendazol het ontstaan van E. coli antibioticaresistentie zou kunnen versterken (Tysnes et al., 2016).

een alternatief is het gebruik van Ronidazol, waarvan is aangetoond dat het effectief is tegen Giardiasis bij honden (Fiechter et al., 2012) en katten (Zanzani et al., 2016). Ronidazol wordt momenteel ook gebruikt voor de behandeling van Trichomonas foetusinfectie bij katten.,

Het wordt niet aanbevolen om asymptomatische katten te behandelen, maar in multi-cat-omgevingen waar katten klinische symptomen vertonen, kan het efficiënter zijn om alle dieren (honden en katten) die samen leven te behandelen (ESCCAP-aanbeveling). Bovendien moeten positieve katten die in contact komen met immuungecompromitteerde mensen worden behandeld.

naast het behandelen van de geïnfecteerde katten is het van cruciaal belang om de omgeving te beheren om superinfectie en herinfectie na de behandeling te voorkomen.,

preventie en hygiëne

in verontreinigde omgevingen zijn intensieve reiniging en het gebruik van 4-chloor-M-kresol (Chloorkresol) of quaternaire ammoniumverbindingen efficiënt om herinfectie en verspreiding van de infectie in multi-cat huizen te voorkomen. Uitwerpselen van besmette dieren moeten worden vernietigd en kommen en oppervlakken moeten worden gereinigd en ontsmet met quaternaire ammoniumverbindingen. Indien mogelijk kan het verplaatsen van de kat naar een andere kamer ook helpen om herinfectie te voorkomen.,

wassen / shampooen van dieren, of ten minste het perianale gebied, met shampoo die chloorhexidine bevat aan het begin en het einde van de behandeling kan helpen om de cysten te elimineren.

testen kunnen worden voorgesteld voor nieuwe katten die in een multi-cat omgeving komen om introductie van de parasiet te voorkomen. Dit kan tijdens de quarantaineperiode.

zorgpersoneel (verpleegkundigen, dierenartsen, diergeneeskundige studenten) moet op de hoogte zijn van en zich houden aan de hygiënevoorschriften.

een vaccin op basis van geïnactiveerde trophozoieten is in de VS gebruikt, maar niet in Europa; het is niet langer beschikbaar., Het werd gebruikt voor behandeling en preventie.

zoönotisch risico

veel Europese studies uitgevoerd in Duitsland, italië, spanje, griekenland en Polen toonden de aanwezigheid aan van subgroep A bij katten (Paoletti et al., 2010; Dado et al., 2012; Sotiriadou et al., 2013; Zanzani et al., 2014; Pallant et al., 2015; Piekarska et al., 2016; Kostopoulou et al., 2017; Gil et al., 2017), hetzij alleen of als een dubbele infectie (A en F; Dado et al., 2012). Genotype B is ook geïdentificeerd bij katten (Pallant et al., 2015; Kostopoulou et al.,, 2017), maar een komt het meest voor, volgens de verschillende Europese studies en een Canadese (McDowall et al., 2011). Het risico op het herbergen van zoönotische Giardia lijkt hoger te zijn bij jonge katten <1 jaar in vergelijking met oudere katten.

in een recente studie werden geen zoönotische assemblages vastgesteld bij 3 Giardia-positieve honden en 2 positieve katten die in de regio Alava in Spanje wonen, wat erop wijst dat de overdracht van Giardia door huisdieren in het huishouden, indien deze voorkomt, zelden voorkomt. In deze studie geen gelijktijdige infecties bij menselijke en hond/katachtige gastheren door G., duodenalis werden aangetoond hoewel 29% (16/55) van de honden en 5,9% van de katten positief testten (de Lucio et al., 2017), en de aanwezigheid van zoönotische assemblage A werd gedetecteerd bij katten in een opvanghuis in dezelfde regio (Gil et al., 2017).

anderzijds bleek uit een onderzoek dat werd uitgevoerd bij kinderen met slechte omgevingsomstandigheden in Slowakije dat cat-specifieke assemblage F aanwezig is bij mensen in Europa (Pipikova et al., 2018).,

tot op heden is er geen onderzoek dat directe overdracht van Giardia van katten op de mens aantoont en de belangrijkste besmettingsbronnen voor de mens lijken rauwe groenten en water te zijn. Bovendien is de prevalentie van Giardia-infectie bij asymptomatische katten laag in de meeste Europese landen.

echter, hoewel er geen bewijs is van directe overdracht van Giardia van katten op mensen en gezien het feit dat zoönotische soorten soms worden gedetecteerd bij geïnfecteerde (jonge) katten, moet rekening worden gehouden met het zoönotische potentieel van Giardia bij katten wanneer jonge katten leven met immuungecompromitteerde mensen., Daarom wordt het testen van dergelijke katten aanbevolen.

erkenning

ABCD Europe erkent dankbaar de steun van Boehringer Ingelheim (de oprichtende sponsor van de ABCD) en Virbac.

Ballweber LR, Xiao L, Bowman DD, Kahn G, Cama VA (2010): Giardiasis in dogs and cats: update on epidemiology and public health significance. Trends Parasitol 26, 180-189.

Barr SC, Bowman DD, Erb HN (1992): Evaluation of two test procedures for diagnosis of giardiasis in dogs. Am J Vet Res 53, 2028.,

Barr SC, Bowman DD, Heller RL (1994): Efficacy of fenbendazole against giardiasis in dogs. Am J Vet Res 55, 988-990.

Bouzid m, Halai K, Jeffreys D, Hunter PR (2015): The prevalence of Giardia infection in dogs and cats, a systematic review and meta-analysis of prevalence studies from stoelgang samples. Dierenarts Parasitol 207, 181-202.

Cirak VY, Bauer C (2004): Comparison of conventional coproscopical methods and commercial coproantigen ELISA kits for the detection of Giardia and Cryptosporidium infections in dogs and cats. Berl Munch Tierarztl Wochenschr 117, 410-413.,

Dado d, Montoya A, Blanco MA, Miró G, Saugar JM, Bailo B, et al (2012): Prevalence and genotypes of Giardia duodenalis from dogs in Spain: possible zoonotic transmission and public health importance. Parasitol Res 111, 2419-2422.

De Lucio A, Bailo B, Aguilera M, Cardona GA, Fernández-Crespo JC, Carmena D (2017): No molecular epidemiological evidence supporting household transmission of zoonotic Giardia duodenalis and Cryptosporidium spp. van huisdieren Honden en katten in de provincie Álava, Noord-Spanje. Acta Trop 170, 48-56.,

Fiechter R, Deplazes P, Schnyder M, et al (2012): Control of Giardia Infections With Ronidazole and Intensive Hygiene Management in a Dog Kennel. Dierenarts Parasitol 187, 93-98.

Gil h, Cano L, De Lucio A, Bailo B, De Mingo MH, Cardona GA, Fernández-Basterra JA, Aramburu-Aguirre J, López-Molina N, Carmena D (2017): Detection and molecular diversity of Giardia duodenalis and Cryptosporidium spp. in beschutte honden en katten in Noord-Spanje. Infecteer Genet Evol 50, 62-69.,

Hinney B, Ederer C, Stengl C, Wilding K, Štrkolcová G, Harl J, Flechl E, Fuehrer HP, Joachim A (2015): Enteric protozoa of cats and their zoonotic potential – a field study from Austria. Parasitol Res 114, 2003-2006.

Keith CL, Radecki SV, Lappin MR (2003): Evaluation of Fenbendazole for treatment of Giardia infection in cats gelijktijdig infected with Cryptosporidium parvum. Am J Vet Res 64, 1027-1029.,

Kostopoulou D, Claerebout E, Arvanitis D, Ligda P, Voutzourakis N, Casaert s, Sotiraki S (2017): Abundance, zoonotic potential and risk factors of intestinal parasitism Among dog and cat populations: The scenario of Crete, Greece. Parasiteer Vectoren 10, 43.

Lebbad M, Mattson JG, Christensson B, Ljungstrom B, Backhans A, Andersson JO, Svard SG (2010): From mouse to moose: multilocus genotyping of Giardia isolates from various animal species. Dierenarts Parasitol 168, 231-239.,

McDowall RM, Peregrine AS, Leonard EK, Lacombe C, Lake M, Rebelo AR, et al (2011): Evaluation of the zoonotic potential of Giardia duodenalis in fecal samples from dogs and cats in Ontario. Can Vete J 12, 1329-1333.

McGlade TR, Robertson ID, Elliot AD, Thompson RC (2003): High prevalence of Giardia detected in cats by PCR. Dierenarts Parasitol 110, 197-205.

Olson ME, Leonard NJ, Srout J (2010): Prevalence and diagnosis of Giardia infection in dogs and cats using a fecal antigen test and fecal smear. Kan J 51, 640-642 Controleren.,

Pallant L, Barutzki D, Schaper R, Thompson RC (2015):.De epidemiologie van infecties met Giardia soorten en genotypes bij goed verzorgde honden en katten in Duitsland. Parasiteer Vectoren 8, 2.

Paoletti B, Otranto D, Weigl s, Giangaspero A, Di Cesare a, Traversa D (2010): Prevalence and genetic characterization of Giardia and Cryptosporidium in cats from Italy. Res Vet Sci 91, 397-399.

Piekarska J, Bajzert J, Gorczykowski M, Kantyka M, Podkowik M (2016): Molecular identification of Giardia duodenalis isolates from domestic dogs and cats in Wroclaw, Poland., Ann Agric Environ Med 23, 410-415.

Pipiková J, Papajová I, Majláthová V, Šoltys J, Bystrianska J, Schusterová I, Vargová V (2018): First report on Giardia duodenalis assemblage F in Slovakian children living in poor environmental conditions. J Microbiol Immunol Infected 53, 148-156.

Sommer MF, Rupp P, Pietsch M, Kaspar A, Beelitz P( 2018): Giardia in a selected population of dogs and cats in Germany – diagnostics, coinfections and assemblages. Dierenarts Parasitol 249, 49-56.,

Sotiriadou I, Pantchev N, Gassmann D, Karanis P( 2013): Molecular identification of Giardia and Cryptosporidium from dogs and cats. Parasiet 20, 8.

Thompson RC, Monis P (2012): Giardia – from genome to proteome. Adv Parasit 78, 57-95.

Tysnes KR, Luyckx K, Cantas L ,Robertson LJ( 2016): Treatment of feline giardiasis during an outbreak of diarree in a cattery: potential effects on fecal Escherichia coli resistance patterns. J Feline Med Surg 18, 679-682.,

Xiao L, Fayer R (2008): Molecular characterisation of species and genotypes of Cryptosporidium and Giardia and assessment of zoonotic transmission. Int J Parasitol 38, 1239-1255.

Yang R, Ying JL, Monis P, Ryan u (2015): Molecular characterisation of Cryptosporidium and Giardia in cats (Felis catus) in Western Australia. Exp Parasitol 155, 13-18.

Zanzani SA, Gazzonis AL, Scarpa P, Berrilli F, Manfredi MT (2014): Intestinal parasites of owned dogs and cats from metropolitan and micropolitan areas: prevalence, zoonotic risks, and pet owner awareness in northern Italy., Biomed Res Int.: 2014: 696-508.