Giardiasi/

A cura di giugno 2020

Le linee guida Giardiasi nei gatti sono state pubblicate da Tim Gruffydd-Jones et al. nel Journal of Feline Medicine and Surgery 2013, 15, 650-652. Questo aggiornamento è stato compilato da Corine Boucraut-Baralon.

Sinossi

Giardia è un parassita protozoico che infetta l’intestino tenue dei gatti e può causare diarrea. I biotipi considerati come biotipi specifici felini non sembrano infettare l’uomo, ma i biotipi zoonotici (isolati da casi umani) si trovano frequentemente nei gatti., L’infezione è più comune nei gatti giovani, in particolare da sfondi multi-gatto. I gatti infetti che sviluppano segni clinici mostrano diarrea intestinale di piccole dimensioni e può essere associata una perdita di peso. La diagnosi di infezione è di solito basata su un ELISA in pratica per l’antigene fecale o la flottazione di solfato di zinco di diversi campioni fecali raggruppati. I test PCR sono disponibili ma non ampiamente utilizzati. L’infezione può essere rilevata in gatti clinicamente sani; quindi, l’interpretazione dei risultati positivi nei gatti con diarrea richiede attenzione. Fenbendazolo o metronidazolo sono i trattamenti di scelta., Poiché le alterazioni intestinali secondarie potrebbero richiedere del tempo per risolversi, la diarrea può continuare anche dopo che l’infezione è stata eliminata.

Agente

Diversi nomi sono stati usati per il parassita protozoo flagellato coccidiano giardia – G. duodenalis (noto anche come G. lamblia o G. intestinalis). Giardia può infettare un numero di host, incluso l’uomo. Sono stati identificati otto diversi sottotipi molecolari, designati A-H (Tabella 1). F è il sottogruppo visto nei gatti, mentre A e B sono i principali sottogruppi nell’uomo (Lebbad et al., 2010)., Questa non è stata quindi considerata un’infezione zoonotica (Xiao e Fayer, 2008; Ballweber et al., 2010), anche se numerosi studi recenti hanno dimostrato che i sottotipi A e B possono essere isolati da cani e gatti, a volte più frequentemente rispetto al sottotipo F che è considerato felino-specifico.

Tabella 1. Assemblaggi genetici (sottotipi) di Giardia duodenalis che infettano diverse specie (nomenclatura rivista da Thompson e Monis, 2012)

Ciclo di vita

Il parassita ha un ciclo di vita diretto., Vive nell’intestino tenue inferiore del gatto nella sua forma di trofozoite, aderente alla parete intestinale. Si replica per fissione binaria per produrre la forma incistata, che viene passata nelle feci oltre ai trofozoiti.

Epidemiologia

Giardia viene trasmessa per via fecale-orale. Sebbene i trofozoiti siano escreti nelle feci, questi non sopravvivono a lungo nell’ambiente ed è improbabile che causino infezioni., Al contrario, le cisti sono altamente infettive e la trasmissione di successo richiede solo un piccolo numero da ingerire. Le cisti possono sopravvivere nell’ambiente fino a diversi mesi in condizioni ideali e quindi può verificarsi una trasmissione indiretta tramite contaminazione fecale.

Studi epidemiologici in diversi paesi e campionamento di diverse popolazioni di gatti hanno mostrato una prevalenza variabile. È variata in base al test diagnostico di screening utilizzato, ma generalmente la prevalenza è variata dall ‘ 1 al 20% (Paoletti et al., 2010; Dado et al., 2012; Sotiriadou et al., 2013; Hinney et al.,, 2015; Pallant et al., 2015; Piekarska et al., 2016; Gil et al., 2017; Kostopoulou et al., 2017). In recenti studi spagnoli, la prevalenza di infezione nei gatti è bassa rispetto ai cani (de Lucio et al., 2017; Gil et al., 2017). In uno studio recente dalla Germania, la prevalenza in cani e gatti utilizzando un test ELISA che rileva coproantigen ha mostrato una prevalenza più elevata del 30 e del 17% rispettivamente in cani e gatti (Sommer et al., 2018)

In uno studio di meta-analisi, è stato dimostrato che la prevalenza era più alta nei gatti con diarrea rispetto ai gatti sani (Bouzid et al., 2015)., La prevalenza era anche più alta nei gatti giovani (Bouzid et al., 2015; Pallant et al., 2015; Kostopoulou et al., 2017) in molti studi e in gatti di razza in uno studio tedesco (Pallant et al., 2015). La prevalenza nei rifugi sembra essere superiore a quella dei gatti di proprietà (Hinney et al., 2015; de Lucio et al., 2017; Gil et al., 2017).

Patogenesi

Il parassita può causare danni e perdita delle cellule epiteliali dell’intestino tenue inferiore, provocando una risposta infiammatoria. Ci può essere ottundimento dei villi intestinali che portano al malassorbimento.,

Segni clinici

I gatti giovani sono più suscettibili sia alle infezioni che alle malattie associate, con la maggior parte delle infezioni cliniche che si verificano nei gatti al di sotto di un anno di età. Molti casi di infezione da Giardia non sono associati a una malattia palese e l’importanza di questo parassita come agente patogeno diarroico nei gatti non è chiara. Le infezioni sperimentali hanno indotto segni clinici, ma non in tutti i casi. Il meccanismo con cui viene indotta la diarrea non è chiaro, ma si pensa che sia correlato al malassorbimento. Questo può essere accompagnato da perdita di peso, che è una caratteristica importante in alcuni casi., La diarrea è tipicamente di natura intestinale piccola con passaggio di feci liquide o semi-liquide, ma a volte la diarrea è intestinale grande, contenente muco / sangue. Il decorso clinico della malattia può durare per settimane.

Immunità

La risposta immunitaria all’infezione da Giardia è poco conosciuta nei gatti. Sulla base delle informazioni provenienti dall’infezione in altre specie, si presume che l’immunità cellulare e la risposta IgA siano fondamentali per fornire un’immunità protettiva.,

Diagnosi

L’infezione viene diagnosticata utilizzando l’esame diretto di strisci fecali (wet mount examination), metodi di flottazione fecale, saggi di antigene ELISA fecale, immunofluorescenza diretta su strisci fecali e PCR.

I trofozoiti possono essere identificati in strisci fecali freschi. Sono mobili con un’azione rotolante. Una piccola quantità di feci o muco appena passati viene mescolata con una goccia di soluzione salina su un vetrino da microscopio, coperta con un coprioggetto e immediatamente esaminata al microscopio con un ingrandimento di x100. Un ulteriore esame a x400 consente l’identificazione definitiva., È anche possibile utilizzare l’esame microscopico degli aspirati duodenali raccolti durante l’intubazione endoscopica dell’intestino tenue per i trofozoiti. Tuttavia, Giardia tende a risiedere più in basso nell’intestino tenue dei gatti, oltre la portata dell’intubazione endoscopica (McDowall et al., 2011).

Si raccomanda un metodo di flottazione al solfato di zinco per lo screening fecale. L’escrezione delle cisti è irregolare e quindi diversi (di solito tre) campioni fecali (raccolti in giorni consecutivi o alterni) devono essere sottoposti a screening., I metodi di routine di sale saturo o saccarosio sono insoddisfacenti poiché portano alla distorsione delle cisti.

È anche possibile utilizzare una tecnica di anticorpi fluorescenti diretti per rilevare le cisti negli strisci fecali, sebbene questo test non sia ampiamente utilizzato in Europa.

Sono disponibili tecniche ELISA per la rilevazione dell’antigene nelle feci, incluso un test SNAP in-practice (IDEXX Ltd.), ma questi metodi non sembrano essere più sensibili di un attento screening fecale (Barr et al., 1992)., Gli studi hanno dimostrato che il rilevamento ELISA dell’antigene correla bene con i risultati dello screening diretto degli anticorpi fluorescenti (Cirak e Bauer, 2004).

I test PCR sono disponibili ma non ampiamente utilizzati. Hanno il vantaggio di essere in grado di identificare il sottotipo presente. I primi studi basati sulla PCR hanno rivelato un’alta percentuale di positivi (fino all ‘ 80%), il che ha sollevato preoccupazioni sul fatto che i test PCR potrebbero rilevare infezioni non clinicamente rilevanti (McGlade et al., 2003)., Tuttavia, sono ora disponibili saggi quantitativi di PCR in tempo reale per la rilevazione di Giardia e studi recenti hanno dato tassi di prevalenza simili ad altre tecniche (Yang et al., 2015).

Il metodo di flottazione fecale era il test standard utilizzato in passato, ma il test dell’antigene fecale in pratica sembra essere altrettanto sensibile e specifico ed è conveniente da eseguire. L’esame degli strisci fecali è economico e ha il vantaggio di identificare altri potenziali parassiti – ma non è popolare nella pratica ed è meno sensibile (Olson et al., 2010).,

Un approccio pragmatico spesso utilizzato dai professionisti come alternativa ai test è quello di valutare la risposta al trattamento. Tuttavia, questo approccio dovrebbe essere evitato a causa del rischio di alterare la flora intestinale con antibiotici. Inoltre, le coinfezioni con altri parassiti come Tritrichomonas foetus o Cryptosporidium sono frequenti e il trattamento, se necessario, deve essere adattato ai risultati delle analisi.,

Trattamento

A causa del potenziale aspetto di resistenza antibatterica e parassiticida, non è raccomandato il trattamento di gatti asintomatici Giardia-positivi, specialmente con metronidazolo o fenbendazolo.

Il trattamento standard per l’infezione da Giardia è stato generalmente un imidazolo, di solito fenbendazolo (Panacur) somministrato a 50 mg/kg per 5-7 giorni (Barr et al., 1994; Keith et al., 2003). Fenbendazole può essere usato in regine gravide., Il metronidazolo è un’alternativa e la raccomandazione originale era di usarlo alla dose di 50 mg/kg per cinque giorni, ma questo farmaco non deve essere usato nelle regine in gravidanza. Questo dosaggio comporta un aumentato rischio di effetti collaterali – tossicità nervosa centrale che causa debolezza, atassia, disorientamento e convulsioni. Recentemente è stato suggerito che un dosaggio giornaliero di 25 mg / kg è efficace ed è improbabile che induca effetti collaterali., In alcuni casi difficili che coinvolgono molti gatti infetti, potrebbe essere necessario un secondo trattamento e, in tale situazione, una combinazione di fenbendazolo e metronidazolo potrebbe essere efficace. Tuttavia, è stato suggerito che un secondo trattamento con fenbendazolo potrebbe potenziare l’emergere di resistenza agli antibiotici di E. coli (Tysnes et al., 2016).

Un’alternativa è usare Ronidazolo che ha dimostrato di essere efficace contro la giardiasi nei cani (Fiechter et al., 2012) e gatti (Zanzani et al., 2016). Il ronidazolo è anche attualmente usato per trattare l’infezione fetale da Trichomonas nei gatti.,

Non è raccomandato trattare gatti asintomatici, ma in ambienti con più gatti in cui i gatti presentano segni clinici potrebbe essere più efficace trattare tutti gli animali (cani e gatti) che vivono insieme (raccomandazione ESCCAP). Inoltre, i gatti positivi che vivono a contatto con persone immunocompromesse dovrebbero essere trattati.

Oltre a trattare i gatti infetti, è fondamentale gestire l’ambiente per prevenire la superinfezione e la reinfezione dopo il trattamento.,

Prevenzione e igiene

In ambienti contaminati, la pulizia intensiva e l’uso di 4-cloro-M-cresolo (Clorocresolo) o composti di ammonio quaternario sono efficaci per prevenire la reinfezione e la diffusione dell’infezione in case multi-gatto. Le feci di animali infetti devono essere distrutte e le ciotole e le superfici devono essere pulite e disinfettate con composti di ammonio quaternario. Se possibile, spostare il gatto in un’altra stanza può anche aiutare ad evitare la reinfezione.,

Lavare / lavare gli animali, o almeno la zona perianale, con shampoo contenenti clorexidina all’inizio e alla fine del trattamento può aiutare ad eliminare le cisti.

Potrebbero essere proposti test per nuovi gatti che entrano in un ambiente multi-gatto per evitare l’introduzione del parassita. Questo può essere fatto durante il periodo di quarantena.

Il personale di assistenza (infermieri, veterinari, studenti di veterinaria) deve essere consapevole e deve rispettare le norme igieniche.

Un vaccino a base di trofozoiti inattivati è stato utilizzato negli Stati Uniti ma non in Europa; non è più disponibile., È stato usato per il trattamento e la prevenzione.

Rischio zoonotico

Molti studi europei condotti in Germania, Italia, Spagna, Grecia e Polonia hanno dimostrato la presenza del sottogruppo A nei gatti (Paoletti et al., 2010; Dado et al., 2012; Sotiriadou et al., 2013; Zanzani et al., 2014; Pallant et al., 2015; Piekarska et al., 2016; Kostopoulou et al., 2017; Gil et al., 2017), da solo o come doppia infezione (A e F; Dado et al., 2012). Il genotipo B è stato identificato anche nei gatti (Pallant et al., 2015; Kostopoulou et al.,, 2017), ma A è più diffuso, secondo i diversi studi europei e uno canadese (McDowall et al., 2011). Il rischio di ospitare Giardia zoonotica sembra essere più elevato nei gatti giovani <1 anno rispetto ai gatti più anziani.

Un recente studio non è riuscito a rilevare assemblaggi zoonotici in 3 cani Giardia positivi e 2 gatti positivi che vivono nella regione di Alava in Spagna, suggerendo che la trasmissione domestica di Giardia da parte di animali domestici, se si verifica, è rara. In questo studio nessuna infezione simultanea negli ospiti umani e canini / felini da parte di G., duodenalis sono stati dimostrati anche se il 29% (16/55) dei cani e il 5,9% dei gatti sono risultati positivi (de Lucio et al., 2017), e la presenza di assemblaggio zoonotico A è stata rilevata nei gatti in un rifugio nella stessa regione (Gil et al., 2017).

D’altra parte, uno studio condotto in bambini provenienti da cattive condizioni ambientali in Slovacchia ha dimostrato che l’assemblaggio specifico del gatto F è presente negli esseri umani in Europa (Pipikova et al., 2018).,

Ad oggi non esiste uno studio che dimostri la trasmissione diretta di Giardia dai gatti all’uomo e le principali fonti di contaminazione per l’uomo sembrano essere verdure crude e acqua. Inoltre, la prevalenza dell’infezione da Giardia nei gatti asintomatici è bassa nella maggior parte dei paesi europei.

Tuttavia, sebbene non vi sia alcuna prova di trasmissione diretta di Giardia dai gatti agli esseri umani e considerando che le specie zoonotiche sono talvolta rilevate in gatti infetti (giovani), il potenziale zoonotico di Giardia nei gatti dovrebbe essere considerato quando i gatti giovani vivono con persone immunocompromesse., Si raccomanda pertanto di testare tali gatti.

Riconoscimento

ABCD Europe riconosce con gratitudine il sostegno di Boehringer Ingelheim (sponsor fondatore dell’ABCD) e Virbac.

Ballweber LR, Xiao L, Bowman DD, Kahn G, Cama VA (2010): Giardiasi in cani e gatti: aggiornamento sull’epidemiologia e sul significato della salute pubblica. Tendenze Parasitol 26, 180-189.

Barr SC, Bowman DD, Erb HN (1992): Valutazione di due procedure di test per la diagnosi di giardiasi nei cani. Am J Vet Res 53, 2028.,

Barr SC, Bowman DD, Heller RL (1994): Efficacia del fenbendazolo contro la giardiasi nei cani. Am J Vet Res 55, 988-990.

Bouzid M, Halai K, Jeffreys D, Hunter PR (2015): La prevalenza dell’infezione da Giardia nei cani e nei gatti, una revisione sistematica e una meta-analisi degli studi sulla prevalenza da campioni di feci. Vet Parasitol 207, 181-202.

Cirak VY, Bauer C (2004): Confronto di metodi coproscopici convenzionali e kit ELISA coproantigen commerciali per la rilevazione di infezioni da Giardia e Cryptosporidium in cani e gatti. Berl Munch Tierarztl Wochenschr 117, 410-413.,

Dado D, Montoya A, Blanco MA, Miró G, Saugar JM, Bailo B, et al (2012): Prevalenza e genotipi di Giardia duodenalis da cani in Spagna: possibile trasmissione zoonotica e importanza per la salute pubblica. Parasitolo Res 111, 2419-2422.

de Lucio A, Bailo B, Aguilera M, Cardona GA, Fernández-Crespo JC, Carmena D (2017): Nessuna evidenza epidemiologica molecolare a sostegno della trasmissione domestica di zoonotica Giardia duodenalis e Cryptosporidium spp. da cani e gatti nella provincia di Áava, nel nord della Spagna. Acta Trop 170, 48-56.,

Fiechter R, Deplazes P, Schnyder M, et al (2012): Controllo delle infezioni da Giardia con ronidazolo e gestione intensiva dell’igiene in un canile. Vet Parasitol 187, 93-98.

Gil H, Cano L, de Lucio A, Bailo B, de Mingo MH, Cardona GA, Fernández-Basterra JA, Aramburu-Aguirre J, López-Molina N, Carmena D (2017): Rilevamento e diversità molecolare di Giardia duodenalis e Cryptosporidium spp. in cani e gatti riparati nel nord della Spagna. Infettare Genet Evol 50, 62-69.,

Hinney B, Ederer C, Stengl C, Wilding K, Štrkolcová G, Harl J, Flechl E, Fuehrer HP, Joachim A (2015): Protozoi enterici dei gatti e il loro potenziale zoonotico – uno studio sul campo dall’Austria. Parasitol Res 114, 2003-2006.

Keith CL, Radecki SV, Lappin MR (2003): Valutazione del fenbendazolo per il trattamento dell’infezione da Giardia in gatti contemporaneamente infetti da Cryptosporidium parvum. Am J Vet Res 64, 1027-1029.,

Kostopoulou D, Claerebout E, Arvanitis D, Ligda P, Voutzourakis N, Casaert S, Sotiraki S (2017): Abbondanza, potenziale zoonotico e fattori di rischio del parassitismo intestinale tra le popolazioni di cani e gatti: Lo scenario di Creta, Grecia. Vettori parassitici 10, 43.

Lebbad M, Mattson JG, Christensson B, Ljungstrom B, Backhans A, Andersson JO, Svard SG (2010): Dal topo all’alce: genotipizzazione multilocus di isolati di Giardia da varie specie animali. Vet Parasitol 168, 231-239.,

McDowall RM, Peregrine AS, Leonard EK, Lacombe C, Lake M, Rebelo AR, et al (2011): Valutazione del potenziale zoonotico di Giardia duodenalis in campioni fecali di cani e gatti in Ontario. Can Vet J 12, 1329-1333.

McGlade TR, Robertson ID, Elliot AD, Thompson RC (2003): Alta prevalenza di Giardia rilevata nei gatti mediante PCR. Vet Parasitol 110, 197-205.

Olson ME, Leonard NJ, Srout J (2010): Prevalenza e diagnosi dell’infezione da Giardia in cani e gatti utilizzando un test dell’antigene fecale e uno striscio fecale. Può Vet J 51, 640-642.,Per maggiori informazioni clicca qui.L’epidemiologia delle infezioni con specie Giardia e genotipi in cani e gatti ben curati in Germania. Vettori parassitici 8, 2.

Paoletti B, Otranto D, Weigl S, Giangaspero A, Di Cesare A, Traversa D (2010): Prevalenza e caratterizzazione genetica di Giardia e Cryptosporidium nei gatti italiani. Res Vet Sci 91, 397-399.

Piekarska J, Bajzert J, Gorczykowski M, Kantyka M, Podkowik M (2016): Identificazione molecolare di isolati di Giardia duodenalis da cani e gatti domestici a Wroclaw, Polonia., Ann Agric Environ Med 23, 410-415.

Pipiková J, Papajová I, Majláthová V, Šoltys J, Bystrianska J, Schusterová I, Vargová V (2018): Primo rapporto su Giardia duodenalis assemblage F in bambini slovacchi che vivono in cattive condizioni ambientali. J Microbiol Immunol Infetta 53, 148-156.

Sommer MF, Rupp P, Pietsch M, Kaspar A, Beelitz P (2018): Giardia in una popolazione selezionata di cani e gatti in Germania – diagnostica, coinfezioni e assemblaggi. Vet Parasitol 249, 49-56.,

Sotiriadou I, Pantchev N, Gassmann D, Karanis P (2013): Identificazione molecolare di Giardia e Cryptosporidium da cani e gatti. Parassita 20, 8.

Thompson RC, Monis P( 2012): Giardia – dal genoma al proteoma. Adv Parasit 78, 57-95.

Tysnes KR, Luyckx K, Cantas L, Robertson LJ (2016): Trattamento della giardiasi felina durante un focolaio di diarrea in un allevamento: potenziali effetti sui modelli di resistenza all’Escherichia coli fecale. J Felino Med Surg 18, 679-682.,

Xiao L, Fayer R (2008): Caratterizzazione molecolare di specie e genotipi di Cryptosporidium e Giardia e valutazione della trasmissione zoonotica. Int J Parasitol 38, 1239-1255.

Yang R, Ying JL, Monis P, Ryan U (2015): Caratterizzazione molecolare di Cryptosporidium e Giardia nei gatti (Felis catus) nell’Australia occidentale. Scad Parasitolo 155, 13-18.

Zanzani SA, Gazzonis AL, Scarpa P, Berrilli F, Manfredi MT (2014): Parassiti intestinali di cani e gatti di proprietà di aree metropolitane e micropolitane: prevalenza, rischi zoonotici e consapevolezza del proprietario di animali domestici nel nord Italia., Biomed Res Int.: 2014: 696-508.