Giardiase /

édité en juin 2020

Les lignes directrices sur la giardiase chez les chats ont été publiées par Tim Gruffydd-Jones et al. dans le Journal de Félin de la Médecine et de la Chirurgie, 2013, 15, 650-652. Cette mise à jour a été réalisée par Corine Boucraut-Baralon.

Synopsis

Giardia est un parasite protozoaire qui infecte l’intestin grêle des chats et peut provoquer des diarrhées. Les biotypes considérés comme des biotypes spécifiques aux félins ne semblent pas infecter les humains, mais des biotypes zoonotiques (isolés de cas humains) sont fréquemment trouvés chez les chats., L’Infection est plus fréquente chez les jeunes chats, en particulier de milieux multi-chats. Les chats infectés qui développent des signes cliniques présentent une diarrhée intestinale et une perte de poids peut être associée. Le diagnostic de l’infection est généralement basé sur un test ELISA en pratique pour la flottation d’antigène fécal ou de sulfate de zinc de plusieurs échantillons fécaux mis en commun. Les tests PCR sont disponibles mais pas largement utilisés. L’Infection peut être détectée chez les chats cliniquement sains; l’interprétation des résultats positifs chez les chats souffrant de diarrhée nécessite donc des soins. Le Fenbendazole ou le métronidazole sont les traitements de choix., Comme les changements intestinaux secondaires peuvent prendre du temps à se résorber, la diarrhée peut se poursuivre même après l’élimination de l’infection.

Agent

plusieurs noms ont été utilisés pour le parasite protozoaire flagellé coccidien giardia – G. duodenalis (également connu sous le nom de G. lamblia ou G. intestinalis). Giardia peut infecter un certain nombre d’hôtes, y compris l’homme. Huit sous-types moléculaires différents ont été identifiés, désignés A-H (Tableau 1). F est le sous-groupe observé chez les chats, tandis que A et B sont les principaux sous-groupes chez l’homme (Lebbad et al., 2010)., Cela n’a donc pas été considéré comme une infection zoonotique (Xiao et Fayer, 2008; Ballweber et al., 2010), bien que de nombreuses études récentes aient montré que les sous-types A et B peuvent être isolés des chiens et des chats, parfois plus fréquemment que le sous-Type F qui est considéré comme spécifique aux félins.

Tableau 1. Assemblages génétiques (sous-types) de Giardia duodenalis infectant différentes espèces (nomenclature révisée par Thompson et Monis, 2012)

cycle de vie

Le parasite a un cycle de vie direct., Il vit dans l’intestin grêle inférieur du chat sous sa forme trophozoïte, adhérent à la paroi intestinale. Il se réplique par fission binaire pour produire la forme enkystée, qui est transmise dans les fèces en plus des trophozoïtes.

Epidémiologie

La Giardia est transmise par voie fécale-orale. Bien que les trophozoïtes soient excrétés dans les fèces, ceux-ci ne survivent pas longtemps dans l’environnement et sont peu susceptibles de provoquer une infection., En revanche, les kystes sont très infectieux et la transmission réussie ne nécessite qu’un petit nombre pour être ingéré. Les kystes peuvent survivre dans l’environnement pendant plusieurs mois dans des conditions idéales et une transmission indirecte par contamination fécale peut donc se produire.

Les études épidémiologiques menées dans différents pays et l’échantillonnage de différentes populations de chats ont montré une prévalence variable. Il a varié selon le test de dépistage diagnostique utilisé, mais généralement la prévalence a varié de 1 à 20% (Paoletti et al., 2010; Dado et coll., 2012; Sotiriadou et coll., 2013; Hinney et coll.,, 2015; Pallant et coll., 2015; Piekarska et coll., 2016; Gil et coll., 2017; Kostopoulou et coll., 2017). Dans des études espagnoles récentes, la prévalence de l’infection chez les chats est faible par rapport aux chiens (de Lucio et al., 2017; Gil et coll., 2017). Dans une étude récente en Allemagne, la prévalence chez les chiens et les chats utilisant un test ELISA détectant le coproantigène a montré une prévalence plus élevée de 30 et 17% chez les chiens et les chats respectivement (Sommer et al., 2018)

dans une méta-analyse, il a été démontré que la prévalence était plus élevée chez les chats souffrant de diarrhée que chez les chats en bonne santé (Bouzid et al., 2015)., La prévalence était également plus élevée chez les jeunes chats (Bouzid et al., 2015; Pallant et coll., 2015; Kostopoulou et coll., 2017) dans de nombreuses études et chez des chats de race pure dans une étude allemande (Pallant et al., 2015). La prévalence dans les refuges semble être plus élevée que chez les chats possédés (Hinney et al. En 2015,; de Lucio et coll., 2017; Gil et coll., 2017).

pathogenèse

Le parasite peut endommager et perdre les cellules épithéliales de l’intestin grêle inférieur, provoquant une réponse inflammatoire. Il peut y avoir émoussement des villosités intestinales conduisant à une malabsorption.,

signes cliniques

Les jeunes chats sont plus sensibles à l’infection et à la maladie associée, la plupart des infections cliniques survenant chez les chats de moins d’un an. De nombreux cas D’infection à Giardia ne sont pas associés à une maladie manifeste, et l’importance de ce parasite en tant qu’agent pathogène diarrhéique chez les chats n’est pas claire. Les infections expérimentales ont induit des signes cliniques, mais pas dans tous les cas. Le mécanisme par lequel la diarrhée est induite n’est pas clair, mais on pense qu’il est lié à la malabsorption. Cela peut être accompagné d’une perte de poids, ce qui est une caractéristique importante dans certains cas., La diarrhée est typiquement de nature intestinale avec passage de fèces liquides ou semi-liquides, mais parfois la diarrhée est de gros intestin, contenant du mucus/du sang. L’évolution clinique de la maladie peut durer des semaines.

immunité

la réponse immunitaire à L’infection par Giardia est mal comprise chez le chat. D’après l’information provenant de l’infection chez d’autres espèces, on présume que l’immunité cellulaire et la réponse aux IgA sont essentielles pour assurer une immunité protectrice.,

diagnostic

l’infection est diagnostiquée à l’aide d’un examen direct des frottis fécaux (examen à montage humide), de méthodes de flottation fécale, de tests D’antigène Elisa fécal, d’immunofluorescence directe sur les frottis fécaux et de PCR.

Les trophozoïtes peuvent être identifiés dans les frottis fécaux frais. Ils sont mobiles avec une action de roulement. Une petite quantité de fèces ou de mucus fraîchement passés est mélangée avec une goutte de solution saline sur une lame de microscope, recouverte d’une lamelle et immédiatement examinée au microscope à un grossissement de x100. Un examen plus approfondi à x400 permet une identification définitive., Il est également possible d’utiliser l’examen microscopique des aspirats duodénaux collectés lors de l’intubation endoscopique de l’intestin grêle pour les trophozoïtes. Cependant, Giardia ont tendance à résider plus loin dans l’intestin grêle des chats, au-delà de la portée de l’intubation endoscopique (McDowall et al., 2011).

une méthode de flottation au sulfate de zinc est recommandée pour le dépistage fécal. L’excrétion des kystes est erratique et, par conséquent, plusieurs (généralement trois) échantillons fécaux (prélevés sur des jours consécutifs ou alternés) doivent être examinés., Les méthodes habituelles de sel saturé ou de saccharose ne sont pas satisfaisantes car elles entraînent une distorsion des kystes.

Il est également possible d’utiliser une technique d’anticorps fluorescents directs pour détecter les kystes dans les frottis fécaux, bien que ce test ne soit pas largement utilisé en Europe.

des techniques ELISA pour détecter l’antigène dans les fèces sont disponibles, y compris un test SNAP en pratique (IDEXX Ltd.), mais ces méthodes ne semblent pas être plus sensibles que le dépistage fécal minutieux (Barr et al., 1992)., Des études ont montré que la détection ELISA de l’antigène est bien corrélée avec les résultats de criblage d’anticorps fluorescents directs (Cirak et Bauer, 2004).

Les tests PCR sont disponibles mais peu utilisés. Ils ont l’avantage de pouvoir identifier le sous-Type présent. Les premières études basées sur la PCR ont révélé une forte proportion de positifs (jusqu’à 80%), ce qui a soulevé des préoccupations selon lesquelles les tests PCR pourraient détecter des infections qui ne sont pas cliniquement pertinentes (McGlade et al., 2003)., Cependant, des tests PCR quantitatifs en temps réel sont maintenant disponibles pour la détection de Giardia et des études récentes ont donné des taux de prévalence similaires à d’autres techniques (Yang et al., 2015).

la méthode de flottation fécale était le test standard utilisé dans le passé, mais le test d’antigène fécal en pratique semble être tout aussi sensible et spécifique et est pratique à réaliser. L’examen des frottis fécaux est bon marché et a l’avantage d’identifier d’autres parasites potentiels – mais il n’est pas populaire dans la pratique et est moins sensible (Olson et al., 2010).,

Une approche pragmatique souvent utilisée par les praticiens comme alternative au dépistage consiste à évaluer la réponse au traitement. Cependant, cette approche doit être évitée en raison du risque de modifier la flore intestinale avec des antibiotiques. De plus, les co-infections avec d’autres parasites tels que Tritrichomonas foetus ou Cryptosporidium sont fréquentes et le traitement, si nécessaire, doit être adapté aux résultats des analyses.,

traitement

en raison de l’apparition potentielle d’une résistance aux anti-bactériens et aux parasiticides, il n’est pas recommandé de traiter les chats asymptomatiques Giardia-positifs, en particulier avec le métronidazole ou le fenbendazole.

le traitement standard pour L’infection à Giardia a généralement été un imidazole, généralement du fenbendazole (Panacur) administré à 50 mg/kg pendant 5 à 7 jours (Barr et al., 1994; Keith et coll., 2003). Le Fenbendazole peut être utilisé chez les reines enceintes., Le métronidazole est une alternative, et la recommandation initiale était de l’utiliser à une dose de 50 mg/kg pendant cinq jours, mais ce médicament ne doit pas être utilisé chez les reines enceintes. Ce dosage comporte un risque accru d’effets secondaires – toxicité nerveuse centrale causant la faiblesse, l’ataxie, la désorientation et les saisies. Récemment, il a été suggéré qu’une dose quotidienne de 25 mg/kg est efficace et est peu susceptible d’induire des effets secondaires., Dans certains cas difficiles impliquant de nombreux chats infectés, un deuxième traitement pourrait être nécessaire et, dans cette situation, une combinaison de fenbendazole et de métronidazole pourrait être efficace. Cependant, il a été suggéré qu’un traitement de deuxième cycle avec le fenbendazole pourrait potentialiser l’émergence de la résistance aux antibiotiques D’E. coli (Tysnes et al., 2016).

Une alternative consiste à utiliser le Ronidazole qui s’est avéré efficace contre la giardiase chez le chien (Fiechter et al., 2012) et les chats (Zanzani et coll., 2016). Ronidazole est également actuellement employé pour traiter L’infection foetale de Trichomonas chez les chats.,

Il n’est pas recommandé de traiter les chats asymptomatiques, mais dans les environnements multi-chats où les chats présentent des signes cliniques, il pourrait être plus efficace de traiter tous les animaux (chiens et chats) vivant ensemble (recommandation ESCCAP). De plus, les chats positifs vivant en contact avec des personnes immunodéprimées doivent être traités.

en plus de traiter les chats infectés, il est essentiel de gérer l’environnement pour prévenir la super-infection et la réinfection après le traitement.,

prévention et hygiène

dans les environnements contaminés, un nettoyage intensif et l’utilisation de 4-chlore-m-crésol (Chlorocrésol) ou de composés d’ammonium quaternaire sont efficaces pour prévenir la réinfection et la propagation de l’infection dans les maisons multi-chats. Les excréments des animaux infectés doivent être détruits et les bols et les surfaces doivent être nettoyés et désinfectés avec des composés d’ammonium quaternaire. Si possible, déplacer le chat dans une autre pièce peut également aider à éviter la réinfection.,

Le lavage / shampooing des animaux, ou au moins de la zone périanale, avec un shampooing contenant de la chlorhexidine au début et à la fin du traitement peut aider à éliminer les kystes.

des tests pourraient être proposés pour les nouveaux chats entrant dans un environnement multi-chats afin d’éviter l’introduction du parasite. Cela peut être fait pendant la période de quarantaine.

le personnel soignant (infirmières, vétérinaires, étudiants vétérinaires) doit connaître et respecter les règles d’hygiène.

un vaccin à base de trophozoïtes inactivés a été utilisé aux États-Unis mais pas en Europe; il n’est plus disponible., Il a été utilisé pour le traitement ainsi que la prévention.

risque zoonotique

de nombreuses études européennes menées en Allemagne, en Italie, en Espagne, en Grèce et en Pologne ont démontré la présence du sous-groupe A chez les chats (Paoletti et al., 2010; Dado et coll., 2012; Sotiriadou et coll., 2013; Zanzani et coll., 2014; Pallant et coll., 2015; Piekarska et coll., 2016; Kostopoulou et coll., 2017; Gil et coll., 2017), seule ou en tant que double infection (A et F;Dado et al., 2012). Le génotype B a également été identifié chez les chats (Pallant et al., 2015; Kostopoulou et coll.,, 2017), mais A est le plus répandu, selon les différentes études européennes et une Canadienne (McDowall et al., 2011). Le risque d’héberger une Giardia zoonotique semble être plus élevé chez les jeunes chats <1 an par rapport aux chats plus âgés.

Une étude récente a échoué à détecter des assemblages zoonotiques chez 3 chiens Giardia positifs et 2 chats positifs vivant dans la région D’Alava en Espagne, suggérant que la transmission domestique de Giardia par les animaux de compagnie, si elle se produit, est peu fréquente. Dans cette étude, aucune infection simultanée chez les hôtes humains et canins/félins par G., des duodénalis ont été démontrés bien que 29% (16/55) des chiens et 5,9% des chats aient été testés positifs (de Lucio et al., 2017), et la présence de l’assemblage zoonotique A a été détectée chez des chats dans un refuge de la même région (Gil et al., 2017).

d’autre part, une étude menée chez des enfants de mauvaises conditions environnementales en Slovaquie a montré que l’assemblage spécifique du chat F est présent chez l’homme en Europe (Pipikova et al., 2018).,

à ce jour, aucune étude n’a démontré la transmission directe de Giardia des chats aux humains et les principales sources de contamination pour les humains semblent être les légumes crus et l’eau. De plus, la prévalence de L’infection à Giardia chez les chats asymptomatiques est faible dans la plupart des pays européens.

cependant, bien qu’il n’y ait aucune preuve de transmission directe de Giardia du chat à l’homme et étant donné que des espèces zoonotiques sont parfois détectées chez les (jeunes) chats infectés, le potentiel zoonotique de Giardia chez les chats doit être considéré lorsque les jeunes chats vivent avec des personnes immunodéprimées., Il est donc recommandé de tester ces chats.

Remerciements

ABCD Europe remercie chaleureusement Boehringer Ingelheim (le parrain fondateur de L’ABCD) et Virbac pour leur soutien.

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